تسلسل صبغة Illumina

تقنية تسلسل الصبغة من Illumina هي تقنية تُستخدم لتحديد سلسلة أزواج القواعد في الحمض النووي ، وتُعرف أيضًا باسم تسلسل الحمض النووي . ابتكر برونو كانارد وسيمون سرفاتي مفهوم الكيمياء القابلة للعكس في معهد باستور في باريس. [ 1 ] [ 2 ] وطوّرها شانكار بالاسوبرامانيان وديفيد كلينرمان من جامعة كامبريدج ، [ 3 ] اللذان أسسا لاحقًا شركة Solexa، التي استحوذت عليها Illumina فيما بعد . تعتمد طريقة التسلسل هذه على مُنهيات صبغية قابلة للعكس تُمكّن من تحديد النيوكليوتيدات المفردة ، حيث تُغسل هذه النيوكليوتيدات على خيوط الحمض النووي. ويمكن استخدامها أيضًا لتسلسل الجينوم الكامل والمناطق، وتحليل النسخ ، وعلم الجينوم البيئي ، واكتشاف الحمض النووي الريبوزي الصغير ، وتحديد أنماط المثيلة ، وتحليل تفاعل البروتين مع الحمض النووي على مستوى الجينوم . [ 4 ] [ 5 ]

يرتبط الحمض النووي بالخلية التدفقية عبر تسلسلات مكملة. ينحني الشريط ويرتبط بسلسلة قليلة النوكليوتيدات ثانية مكونًا جسرًا. يقوم إنزيم البوليميراز بتخليق الشريط العكسي. ينفصل الشريطين ويستقيمان. يشكل كل منهما جسرًا جديدًا (تضخيم الجسر). والنتيجة هي مجموعة من نسخ الحمض النووي للشريطين الأمامي والعكسي.

ملخص

تتم هذه العملية بثلاث خطوات أساسية: التضخيم، والتسلسل، والتحليل. تبدأ العملية باستخدام الحمض النووي النقي. يُجزأ الحمض النووي وتُضاف إليه محولات تحتوي على أجزاء تعمل كنقاط مرجعية أثناء التضخيم والتسلسل والتحليل. يُحمّل الحمض النووي المُعدّل على خلية تدفق حيث تتم عمليتا التضخيم والتسلسل. تحتوي خلية التدفق على حُفر نانوية تُباعد بين أجزاء الحمض النووي وتُساعد في منع الازدحام. [ 6 ] تحتوي كل حُفرة نانوية على قليل النوكليوتيدات التي تُوفر نقطة تثبيت للمحولات. بمجرد ارتباط الأجزاء، تبدأ مرحلة تُسمى تكوين العناقيد. تُنتج هذه الخطوة حوالي ألف نسخة من كل جزء من الحمض النووي، وتُجرى باستخدام تفاعل البوليميراز المتسلسل للتضخيم الجسري . بعد ذلك، تُغسل البادئات والنوكليوتيدات المُعدّلة على الشريحة. تحتوي هذه النوكليوتيدات على حاجب فلوري قابل للعكس، بحيث لا يستطيع بوليميراز الحمض النووي إضافة سوى نيوكليوتيد واحد في كل مرة إلى جزء الحمض النووي. [ 6 ] بعد كل دورة من التخليق، تلتقط كاميرا صورة للشريحة. يُحدد الحاسوب القاعدة المُضافة بناءً على طول موجة العلامة الفلورية ، ويسجلها لكل موقع على الشريحة. بعد كل دورة، تُزال الجزيئات غير المُدمجة. ثم تُستخدم خطوة إزالة الحجب الكيميائية لإزالة مجموعة الحجب الطرفية الفلورية 3'. تستمر العملية حتى يتم تسلسل جزيء الحمض النووي بالكامل. [ 5 ] باستخدام هذه التقنية، يتم تسلسل آلاف المواقع في جميع أنحاء الجينوم دفعة واحدة عبر التسلسل المتوازي الضخم .

إجراء

مكتبة الجينوم

بعد تنقية الحمض النووي من عينة جينومية أو توليد الحمض النووي المكمل (cDNA)، يجب تحويله إلى مكتبة من الشظايا، تُعرف بالمكتبة الجينومية ، والتي يمكن تسلسلها لاحقًا باستخدام الجهاز. تتضمن هذه العملية عادةً خطوتين رئيسيتين: تجزئة الحمض النووي ، وإصلاح الأطراف وربط المحولات. هناك طريقتان لتجزئة المكتبة الجينومية: المعالجة بالموجات فوق الصوتية والتجزئة الجزئية . في التجزئة الجزئية، تقوم إنزيمات النقل المعدلة بتقطيع الحمض النووي عشوائيًا إلى شظايا يتراوح طولها بين 50 و500 زوج قاعدي، مع إضافة المحولات في الوقت نفسه. [ 6 ] يمكن أيضًا توليد مكتبة جينية باستخدام المعالجة بالموجات فوق الصوتية لتجزئة الحمض النووي الجينومي إلى أحجام متقاربة باستخدام الموجات فوق الصوتية. بعد ذلك، تُربط محولات متخصصة بالطرفين الأيمن والأيسر للشظايا باستخدام بوليميراز الحمض النووي T7 وليغاز الحمض النووي T4 . تُزال الخيوط التي لم تُربط بها المحولات بالغسل. [ 7 ]

يتم قطع الحمض النووي المزدوج بواسطة الترانسبيوزومات. تُصلح الأطراف المقطوعة، وتُضاف المحولات والفهارس ومواقع ارتباط البادئات والمواقع الطرفية إلى كل سلسلة من الحمض النووي. الصورة مستوحاة جزئيًا من فيديو تسلسل Illumina [ 7 ].

محولات

تحتوي المحولات على ثلاثة أجزاء مختلفة: التسلسل المكمل للدعامة الصلبة (أوليغونوكليوتيدات على خلية التدفق)، وتسلسل الباركود (الفهارس)، وموقع ارتباط بادئ التسلسل. [ 6 ] عادةً ما يكون طول الفهارس ستة أزواج قاعدية، وتُستخدم أثناء تحليل تسلسل الحمض النووي لتحديد العينات. تسمح الفهارس بتشغيل ما يصل إلى 96 عينة مختلفة معًا، وهو ما يُعرف أيضًا باسم التعدد . أثناء التحليل، يقوم الحاسوب بتجميع جميع القراءات التي لها نفس الفهرس معًا. [ 8 ] [ 9 ] تستخدم شركة Illumina نهج "التسلسل بالتخليق". [ 9 ] تتم هذه العملية داخل خلية تدفق زجاجية مطلية بالأكريلاميد. [ 10 ] تحتوي خلية التدفق على أوليغونوكليوتيدات (تسلسلات نيوكليوتيدية قصيرة) تغطي قاع الخلية، وتعمل هذه الأوليغونوكليوتيدات كدعامة صلبة لتثبيت خيوط الحمض النووي في مكانها أثناء التسلسل. عند غسل الحمض النووي المجزأ فوق خلية التدفق، يرتبط المحول المناسب بالدعامة الصلبة المكملة.

تصطف ملايين من النيوكليوتيدات قليلة العدد في الجزء السفلي من كل مسار من مسارات خلية التدفق.

تضخيم الجسر

بمجرد الارتباط، تبدأ عملية تكوين التجمعات. الهدف هو إنشاء مئات من خيوط الحمض النووي المتطابقة. بعضها سيكون الخيط الأمامي، والباقي سيكون الخيط العكسي. لهذا السبب تُستخدم محولات يمين ويسار. تُولّد التجمعات من خلال تضخيم الجسر. يتحرك إنزيم بوليميراز الحمض النووي على طول خيط الحمض النووي، مُنشئًا خيطه المُكمّل. يُزال الخيط الأصلي، ولا يتبقى سوى الخيط العكسي. يوجد في أعلى الخيط العكسي تسلسل محول. ينحني خيط الحمض النووي ويرتبط بالأوليغونوكليوتيد المُكمّل لتسلسل المحول العلوي. يرتبط إنزيم البوليميراز بالخيط العكسي، ويتم تكوين خيطه المُكمّل (المطابق للخيط الأصلي). يُفصل الحمض النووي المزدوج الآن بحيث يمكن لكل خيط أن يرتبط بشكل منفصل بتسلسل أوليغونوكليوتيد مُثبّت على خلية التدفق. سيكون أحدهما هو الخيط العكسي، والآخر هو الخيط الأمامي. تُسمى هذه العملية بتضخيم الجسر، وتحدث لآلاف التجمعات في جميع أنحاء خلية التدفق في وقت واحد. [ 11 ]

التضخيم الاستنساخي

تنحني خيوط الحمض النووي وتلتصق بالدعامة الصلبة مرارًا وتكرارًا. يقوم إنزيم بوليميراز الحمض النووي بتخليق خيط جديد لتكوين قطعة مزدوجة الخيوط، ثم يتم فصلها بحيث تكون جميع خيوط الحمض النووي في منطقة واحدة من مصدر واحد (التضخيم الاستنساخي). يُعد التضخيم الاستنساخي مهمًا لأغراض مراقبة الجودة. إذا وُجد أن أحد الخيوط يحتوي على تسلسل غير طبيعي، فيمكن للعلماء فحص الخيط العكسي للتأكد من احتوائه على التسلسل المكمل لنفس التسلسل غير الطبيعي. يعمل الخيطان الأمامي والخلفي كضوابط للحماية من الشوائب. نظرًا لأن تسلسل Illumina يستخدم إنزيم بوليميراز الحمض النووي، فقد لوحظت أخطاء استبدال القواعد، [ 12 ] خاصةً عند الطرف 3'. [ 13 ] يمكن لقراءات الأطراف المزدوجة، بالإضافة إلى توليد العناقيد، تأكيد حدوث خطأ. يجب أن يكون الخيطان الأمامي والخلفي متكاملين، ويجب أن تتطابق جميع قراءات الخيط العكسي، وجميع قراءات الخيط الأمامي. إذا لم تكن القراءة متشابهة بدرجة كافية مع نظيراتها (التي من المفترض أن تكون نسخة طبق الأصل منها)، فقد يكون حدث خطأ. وقد تم استخدام حد أدنى للتشابه بنسبة 97% في تحليلات بعض المختبرات. [ 13 ]

التسلسل عن طريق التركيب

في نهاية عملية التضخيم الاستنساخي، تُقطع جميع السلاسل العكسية عند الفهرس 2 باستخدام إنزيم تقييد [ 14 ] ، ثم تُغسل من خلية التدفق، تاركةً السلاسل الأمامية فقط. يرتبط البادئ بموقع ارتباط بادئ المحول في السلاسل الأمامية، ويضيف البوليميراز نيوكليوتيدًا ثلاثي الفوسفات (dNTP) موسومًا بصبغة فلورية إلى سلسلة الحمض النووي. لا يمكن إضافة سوى قاعدة واحدة في كل دورة نظرًا لأن الصبغة الفلورية تعمل كمجموعة حجب؛ ومع ذلك، فإن مجموعة الحجب قابلة للعكس [ 6 ] . باستخدام تقنية الألوان الأربعة، تُصدر كل قاعدة من القواعد الأربع لونًا مميزًا (A=أحمر، G=أزرق، T=أخضر، C=أصفر) [ 15 ] ، وبعد كل دورة، يسجل الجهاز القاعدة المضافة. بمجرد تسجيل اللون، تُغسل الصبغة الفلورية، ثم يُغسل نيوكليوتيد ثلاثي الفوسفات آخر فوق خلية التدفق، وتُكرر العملية.

بدأت شركة Illumina، مع إطلاق جهاز NextSeq ثم جهاز MiniSeq، بتقديم تقنية تسلسل جديدة ثنائية اللون. يتم تمييز النيوكليوتيدات إما بأحد لونين (أحمر أو أخضر)، أو بدون لون ("أسود")، أو بمزيج من اللونين (يظهر باللون البرتقالي كمزيج بين الأحمر والأخضر).

تُضاف النيوكليوتيدات الموسومة بالتسلسل إلى شريط الحمض النووي. يحمل كل نيوكليوتيد من النيوكليوتيدات الأربعة علامة تعريفية يمكن إثارتها لإصدار طول موجي مميز. يسجل الحاسوب جميع الانبعاثات، ومن هذه البيانات، تُجرى عملية تحديد القواعد.

بعد قراءة شريط الحمض النووي، يُغسل الشريط المُضاف حديثًا. ثم يرتبط البادئ الأول، ويُبلمر تسلسل البادئ الأول، ويُغسل مرة أخرى. يُشكل الشريط جسرًا مجددًا، ويرتبط الطرف 3' لشريط الحمض النووي بجزيء أوليغونوكليوتيد على خلية التدفق. يرتبط البادئ الثاني، ويُبلمر التسلسل، ويُغسل.

يقوم إنزيم البوليميراز بتسلسل السلسلة المكملة فوق السلسلة المقوسة. ثم تنفصل السلسلتان، ويُحجب الطرف 3' لكل منهما. تُقطع السلسلة الأمامية عند الموقع المحدد، وتُزال بالغسل، وتتكرر عملية التسلسل بالتخليق للسلسلة العكسية.

تحليل البيانات

تُجرى عملية التسلسل لملايين المجموعات في آنٍ واحد، وتحتوي كل مجموعة على ما يقارب 1000 نسخة متطابقة من قطعة الحمض النووي المُدرجة. [ 12 ] تُحلل بيانات التسلسل من خلال إيجاد أجزاء ذات مناطق متداخلة، تُسمى القطع المتجاورة ، ومحاذاتها. إذا كان التسلسل المرجعي معروفًا، تُقارن القطع المتجاورة به لتحديد المتغيرات.

تتيح هذه العملية التدريجية للعلماء رؤية التسلسل الكامل حتى في حال عدم تشغيل تسلسل غير مجزأ؛ ومع ذلك، نظرًا لأن أطوال قراءات Illumina ليست طويلة جدًا [ 13 ] (يمكن لتسلسل HiSeq إنتاج قراءات بطول 90 زوجًا قاعديًا تقريبًا [ 8 ] )، فقد يكون من الصعب تحديد مناطق التكرارات الترادفية القصيرة. [ 8 ] [ 12 ] كذلك، إذا كان التسلسل جديدًا تمامًا (de novo) ولم يكن هناك مرجع، فقد تُسبب المناطق المتكررة صعوبة كبيرة في تجميع التسلسل . [ 12 ] تشمل الصعوبات الإضافية استبدال القواعد (خاصةً في الطرف 3' للقراءات [ 13 ] ) بواسطة بوليميرازات غير دقيقة، والتسلسلات الكيميرية، وانحياز تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR)، وكلها عوامل قد تُساهم في توليد تسلسل غير صحيح. [ 13 ]

مقارنة مع طرق التسلسل الأخرى

تُقدم هذه التقنية العديد من المزايا مقارنةً بطرق التسلسل التقليدية، مثل تسلسل سانجر . يتطلب تسلسل سانجر تفاعلين، أحدهما للبادئ الأمامي والآخر للبادئ العكسي. على عكس تقنية Illumina، يستخدم تسلسل سانجر ثلاثي فوسفات ثنائي ديوكسي نيوكليوسيد (ddNTPs) لتحديد تسلسل قطعة الحمض النووي. تفتقر ddNTPs إلى مجموعة OH في الطرف 3'، مما يُنهي عملية تخليق الحمض النووي بشكل دائم. [ 6 ] في كل أنبوب تفاعل، تُضاف dNTPs وddNTPs، بالإضافة إلى بوليميراز الحمض النووي والبادئات. تُعد نسبة ddNTPs إلى dNTPs مهمة، إذ يجب تخليق قالب الحمض النووي بالكامل، وسيؤدي وجود كمية زائدة من ddNTPs إلى تكوين قطع متعددة بنفس حجم وموقع قالب الحمض النووي. عندما يُضيف بوليميراز الحمض النووي ddNTP، يتم إنهاء القطعة وتخليق قطعة جديدة. كل قطعة مُصنّعة أطول من سابقتها بنوكليوتيد واحد. بعد اكتمال عملية تصنيع قالب الحمض النووي، يتم فصل الأجزاء بواسطة الرحلان الكهربائي الشعيري . في أسفل الأنبوب الشعيري، يقوم ليزر بإثارة جزيئات ddNTPs الموسومة بالفلورة، وتلتقط كاميرا اللون المنبعث.

بفضل الطبيعة الآلية لتقنية تسلسل الصبغات من Illumina، يُمكن تسلسل عدة خيوط في وقت واحد والحصول على بيانات التسلسل الفعلية بسرعة. أما في تقنية تسلسل سانجر، فلا يُمكن تسلسل سوى خيط واحد في كل مرة، وهي عملية بطيئة نسبيًا. تستخدم Illumina بوليميراز الحمض النووي فقط ، على عكس تقنيات التسلسل الأخرى التي تتطلب إنزيمات متعددة ومكلفة (مثل التسلسل الناري ). [ 16 ]

مراجع

  1. CA 2158975 ، كانارد، برونو وسرفاتي ، سيمون، "مشتقات جديدة قابلة للاستخدام في تسلسل الأحماض النووية"، نُشر في 13 أكتوبر 1994، مُسجل باسم معهد باستور 
  2. كانارد ب، سرفاتي ر.س. (أكتوبر 1994). "ركائز بوليميراز الحمض النووي الفلورية ذات العلامات 3' القابلة للعكس". جين . 148 (1): 1-6 . doi : 10.1016/0378-1119(94)90226-7 . PMID 7523248 . 
  3. "تاريخ تسلسل Illumina" . مؤرشف من الأصل في 12 أكتوبر 2014.
  4. "Illumina - حلول التسلسل والتحليل المصفوفي لأبحاث علم الوراثة" . www.illumina.com .
  5. 1 2 ماير م، كيرشر م (يونيو 2010). "تحضير مكتبة تسلسل Illumina لالتقاط وتسلسل الأهداف المتعددة للغاية". بروتوكولات كولد سبرينغ هاربور . 2010 (6) pdb.prot5448. doi : 10.1101/pdb.prot5448 . PMID 20516186 . 
  6. 1 2 3 4 5 6 كلارك، ديفيد ب. (2 نوفمبر 2018). البيولوجيا الجزيئية . بازديرنيك، نانيت جان، ماكجيهي، ميشيل ر. ( الطبعة الثالثة). لندن. ISBN  978-0-12-813289-0. OCLC 1062496183 . {{cite book}}: CS1 maint: موقع الناشر مفقود ( رابط )
  7. 1 2 "تقنية تسلسل Illumina" . يوتيوب . 23 أكتوبر 2013. تم الاطلاع عليه في 24 سبتمبر 2015 .
  8. 1 2 3 فينغ واي جيه، ليو كيو إف، تشين إم واي، ليانغ دي، تشانغ بي (يناير 2016). "التسلسل المتوازي لمنتجات تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) الطويلة نسبيًا باستخدام منصة Illumina HiSeq وتجميع النسخ الجيني". موارد علم البيئة الجزيئية . 16 (1): 91-102 . doi : 10.1111/1755-0998.12429 . PMID 25959587. S2CID 36882760 .  
  9. 1 2 شركة Illumina، Inc. "التسلسل المتعدد باستخدام نظام محلل الجينوم من Illumina" (ملف PDF) . تم الاطلاع عليه بتاريخ 25 سبتمبر 2015 .
  10. كويل إم إيه، سميث إم، كوبلاند بي، أوتو تي دي، هاريس إس آر، كونور تي آر، وآخرون (يوليو 2012). "قصة ثلاث منصات تسلسل الجيل التالي: مقارنة بين أجهزة التسلسل Ion Torrent و Pacific Biosciences و Illumina MiSeq" . BMC Genomics . 13 : 341. doi : 10.1186/1471-2164-13-341 . PMC 3431227. PMID 22827831 .   
  11. كلارك، ديفيد ب.؛ بازديرنيك، نانيت ج.؛ ماكجيهي، ميشيل ر. (2019). البيولوجيا الجزيئية . أكاديميك سيل. ص 253-255 . ISBN  978-0-12-813288-3.
  12. 1 2 3 4 موروزوفا، أو.، ومارا، م. أ. (نوفمبر 2008). "تطبيقات تقنيات التسلسل من الجيل التالي في علم الجينوم الوظيفي". علم الجينوم . 92 (5): 255-264 . doi : 10.1016/j.ygeno.2008.07.001 . PMID 18703132 . 
  13. 1 2 3 4 5 جيون واي إس، بارك إس سي، ليم جيه، تشون جيه، كيم بي إس (يناير 2015). "تحسين آلية عمل لتقليل الأخطاء في تحديد الهوية باستخدام تسلسلات الحمض النووي الريبوزي 16S على منصة Illumina MiSeq". مجلة علم الأحياء الدقيقة . 53 (1): 60-69 . doi : 10.1007/s12275-015-4601-y . PMID 25557481. S2CID 17210846 .  
  14. "وحدة توليد المجموعات 2: نظرة عامة" (ملف PDF) . معهد برود . 4 أغسطس 2025. مؤرشف (ملف PDF) من الأصل في 13 أبريل 2024. تم الاطلاع عليه في 4 أغسطس 2025 .
  15. "الكيمياء والتصوير على جهاز MiSeq | Illumina Knowledge" . knowledge.illumina.com .
  16. روناغي، مصطفى؛ أولين، ماتياس. نيرين ، بال (17/07/1998). "طريقة التسلسل على أساس بيروفوسفات في الوقت الحقيقي" . علوم . 281 (5375): 363–365 . دوى : 10.1126/science.281.5375.363 . ISSN 0036-8075 . بميد 9705713 .