فحص الإنزيم

مطياف بيكمان DU640 للأشعة فوق البنفسجية/المرئية

تُعدّ فحوصات الإنزيمات طرقًا مخبرية لقياس النشاط الإنزيمي . وهي ضرورية لدراسة حركية الإنزيمات وتثبيطها .

وحدات الإنزيم

يمكن التعبير عن كمية أو تركيز الإنزيم بكميات مولية ، كما هو الحال مع أي مادة كيميائية أخرى، أو من حيث النشاط بوحدات الإنزيم .

نشاط الإنزيم

يُعد نشاط الإنزيم مقياسًا لكمية الإنزيم النشط الموجود، وبالتالي فهو يعتمد على ظروف فيزيائية مختلفة، والتي يجب تحديدها .

يتم حسابها باستخدام الصيغة التالية:

أ=نت=ر×V{\displaystyle \mathrm {a} =\mathrm {n} _{\text{t}}=\mathrm {r} \times \mathrm {V} }

أين

أ{\displaystyle \mathrm {a} }= نشاط الإنزيم
نت{\displaystyle \mathrm {n} _{\text{t}}}= عدد مولات المادة المتفاعلة المتحولة لكل وحدة زمنية
ر{\displaystyle \mathrm {r} }= معدل التفاعل
V{\displaystyle \mathrm {V} }حجم التفاعل

وحدة النظام الدولي للوحدات هي الكاتال ، حيث يساوي الكاتال الواحد مولًا واحدًا في الثانية، إلا أن هذه الوحدة كبيرة جدًا. أما القيمة الأكثر عملية وشيوعًا فهي وحدة الإنزيم (U) التي تساوي ميكرومولًا واحدًا في الدقيقة . وتُعادل وحدة الإنزيم الواحدة 16.67 نانوكاتال . [ 1 ] 

يشير نشاط الإنزيم، كما هو مُقاس بالكاتال، عمومًا إلى نشاط الركيزة المستهدفة الطبيعية المفترضة للإنزيم. ويمكن أيضًا التعبير عن نشاط الإنزيم كنشاط ركائز قياسية معينة، مثل الجيلاتين ، حيث يُقاس بوحدات هضم الجيلاتين (GDU)، أو بروتينات الحليب، حيث يُقاس بوحدات تخثر الحليب (MCU). وتستند وحدات GDU وMCU إلى سرعة هضم غرام واحد من الإنزيم للجيلاتين أو بروتينات الحليب، على التوالي. وتُعادل وحدة GDU واحدة تقريبًا 1.5 وحدة MCU. [ 2 ]

إن زيادة كمية الركيزة ستزيد من معدل التفاعل مع الإنزيمات، ولكن بمجرد تجاوز نقطة معينة، سيستقر معدل التفاعل لأن كمية المواقع النشطة المتاحة ظلت ثابتة.

نشاط محدد

يُعد النشاط النوعي للإنزيم وحدة قياس شائعة أخرى. وهو نشاط الإنزيم لكل ملليغرام من البروتين الكلي (معبراً عنه بوحدة ميكرومول / دقيقة/ مليغرام ). يُعطي النشاط النوعي مقياساً لنقاء الإنزيم في الخليط. وهو عبارة عن عدد الميكرومولات من الناتج الذي يُشكّله الإنزيم خلال فترة زمنية محددة (بالدقائق) وفي ظل ظروف معينة لكل ملليغرام من البروتينات الكلية. يُساوي النشاط النوعي معدل التفاعل مضروباً في حجم التفاعل مقسوماً على كتلة البروتين الكلي. وحدة النظام الدولي للوحدات هي كاتال/كيلوغرام، ولكن الوحدة الأكثر عملية هي ميكرومول/(مليغرام*دقيقة).

النشاط النوعي هو مقياس لقدرة الإنزيم على المعالجة (قدرة الإنزيم على المعالجة)، عند تركيز ركيزة محدد (عادة ما يكون مشبعًا) ، وعادة ما يكون ثابتًا بالنسبة للإنزيم النقي.

يمكن إجراء عملية معايرة الموقع النشط للتخلص من الأخطاء الناجمة عن الاختلافات في دفعات الاستزراع و/أو طي الإنزيم بشكل خاطئ وما شابه ذلك. تُعد هذه العملية مقياسًا لكمية الإنزيم النشط، ويتم حسابها، على سبيل المثال، بمعايرة كمية المواقع النشطة الموجودة باستخدام مثبط غير قابل للانعكاس. يُعبر عن النشاط النوعي بوحدة ميكرومول/دقيقة / ملغ من الإنزيم النشط. إذا كان الوزن الجزيئي للإنزيم معروفًا، فيمكن حساب معدل الدوران ، أو ميكرومول من الناتج في الثانية لكل ميكرومول من الإنزيم النشط، من النشاط النوعي. ويمكن تصور معدل الدوران على أنه عدد مرات قيام كل جزيء إنزيم بدورة تحفيزية في الثانية الواحدة.

معدل التفاعل هو تركيز المادة المتفاعلة التي تختفي (أو المنتج الناتج) لكل وحدة زمنية (مول لتر −1 ثانية −1 ).

نسبة النقاء هي 100% × (النشاط النوعي لعينة الإنزيم / النشاط النوعي للإنزيم النقي). تتميز العينة غير النقية بنشاط نوعي أقل لأن جزءًا من كتلتها ليس إنزيمًا. إذا عُرف النشاط النوعي للإنزيم النقي بنسبة 100%، فإن العينة غير النقية ستمتلك نشاطًا نوعيًا أقل، مما يسمح بحساب النقاء والحصول على نتيجة واضحة.

أنواع التحليلات

تقيس جميع فحوصات الإنزيمات إما استهلاك المادة المتفاعلة أو إنتاج الناتج بمرور الوقت. توجد طرق عديدة لقياس تركيزات المواد المتفاعلة والنواتج، ويمكن فحص العديد من الإنزيمات بعدة طرق مختلفة. عادةً ما يدرس علماء الكيمياء الحيوية التفاعلات المحفزة بالإنزيمات باستخدام أربعة أنواع من التجارب: [ 3 ]

  • تجارب المعدل الأولي . عند مزج إنزيم مع كمية كبيرة من الركيزة، يتراكم المركب الوسيط (الإنزيم-الركيزة) بسرعة في مرحلة انتقالية أولية. ثم يصل التفاعل إلى حالة حركية مستقرة، حيث تبقى كمية المركب الوسيط (الإنزيم-الركيزة) ثابتة تقريبًا مع مرور الوقت، ويتغير معدل التفاعل ببطء نسبيًا. تُقاس المعدلات لفترة قصيرة بعد الوصول إلى حالة شبه الاستقرار، عادةً من خلال مراقبة تراكم الناتج مع مرور الوقت. ولأن القياسات تُجرى لفترة قصيرة جدًا، وبسبب الكمية الكبيرة من الركيزة، يمكن افتراض أن كمية الركيزة الحرة تساوي تقريبًا كمية الركيزة الأولية. تُعد تجربة المعدل الأولي أبسط التجارب إجراءً وتحليلاً، إذ تخلو نسبيًا من التعقيدات مثل التفاعل العكسي وتحلل الإنزيم. ولذلك، فهي أكثر أنواع التجارب استخدامًا في حركية الإنزيمات.
  • تجارب منحنى التقدم . في هذه التجارب، تُحدد المعاملات الحركية من خلال معادلات تركيز الأنواع الكيميائية كدالة للزمن. يُسجل تركيز المادة المتفاعلة أو الناتج بمرور الوقت بعد المرحلة الانتقالية السريعة الأولية، ولمدة كافية للسماح للتفاعل بالاقتراب من حالة التوازن. كانت تجارب منحنى التقدم شائعة الاستخدام في المراحل الأولى لدراسة حركية الإنزيمات، ولكنها أصبحت أقل شيوعًا الآن.
  • تجارب الحركية العابرة . في هذه التجارب، يُرصد سلوك التفاعل خلال المرحلة العابرة السريعة الأولية حتى يصل المركب الوسيط إلى مرحلة الحركية المستقرة. وتُعد هذه التجارب أكثر صعوبة من النوعين السابقين، لأنها تتطلب تقنيات متخصصة (مثل التحليل الضوئي الوميضي للمركبات المحصورة) أو خلطًا سريعًا (مثل التدفق المتوقف ، أو التدفق المُخمد، أو التدفق المستمر).
  • تجارب الاسترخاء . في هذه التجارب، يُغيّر مزيج متوازن من الإنزيم والركيزة والناتج، على سبيل المثال بتغيير مفاجئ في درجة الحرارة أو الضغط أو الرقم الهيدروجيني، ثم يُرصد عودته إلى حالة التوازن. يتطلب تحليل هذه التجارب مراعاة التفاعل العكوس تمامًا. علاوة على ذلك، فإن تجارب الاسترخاء غير حساسة نسبيًا للتفاصيل الميكانيكية، وبالتالي لا تُستخدم عادةً لتحديد الآلية، على الرغم من إمكانية استخدامها في ظل ظروف مناسبة.

يمكن تقسيم فحوصات الإنزيم إلى مجموعتين وفقًا لطريقة أخذ العينات: الفحوصات المستمرة ، حيث يعطي الفحص قراءة مستمرة للنشاط، والفحوصات غير المستمرة ، حيث يتم أخذ العينات، وإيقاف التفاعل، ثم تحديد تركيز الركائز/المنتجات.

حامل كوفيت يتم التحكم بدرجة حرارته في جهاز قياس الطيف الضوئي

التحليلات المستمرة

تُعدّ التحليلات المستمرة الأكثر ملاءمة، إذ يكفي إجراء تحليل واحد لتحديد معدل التفاعل دون الحاجة إلى أي إجراء إضافي. وتوجد أنواع عديدة من التحليلات المستمرة.

قياس الطيف الضوئي

في التحليلات الطيفية الضوئية ، يُتابع مسار التفاعل بقياس التغير في كمية الضوء التي يمتصها محلول التحليل. إذا كان هذا الضوء ضمن نطاق الطيف المرئي، يُمكن ملاحظة تغير في لون المحلول، وتُسمى هذه التحليلات بالتحليلات اللونية . يُعد تحليل MTT ، وهو تحليل أكسدة واختزال يستخدم صبغة التترازوليوم كركيزة، مثالًا على التحليلات اللونية.

يُستخدم ضوء الأشعة فوق البنفسجية غالبًا، لأن الإنزيمين المساعدين الشائعين NADH و NADPH يمتصان ضوء الأشعة فوق البنفسجية في صورتهما المختزلة ، ولكنهما لا يمتصانه في صورتهما المؤكسدة . وبالتالي، يمكن قياس نشاط إنزيم الأكسدة والاختزال الذي يستخدم NADH كركيزة من خلال تتبع انخفاض امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند طول موجي 340  نانومتر أثناء استهلاكه للإنزيم المساعد. [ 4 ]

المقايسات المباشرة مقابل المقايسات المزدوجة

اختبار مقترن للهيكسوكيناز باستخدام نازعة هيدروجين الجلوكوز-6-فوسفات

حتى عندما لا يُؤدي تفاعل الإنزيم إلى تغيير في امتصاص الضوء، فإنه لا يزال من الممكن استخدام قياس طيفي ضوئي للإنزيم من خلال استخدام طريقة قياس مُقترنة . في هذه الطريقة، يُستخدم ناتج أحد التفاعلات كركيزة لتفاعل آخر يسهل الكشف عنه. على سبيل المثال، يُظهر الشكل 1 طريقة القياس المُقترنة لإنزيم هيكسوكيناز ، والذي يُمكن قياسه عن طريق ربط إنتاجه لجلوكوز-6-فوسفات بإنتاج NADPH، باستخدام إنزيم نازع هيدروجين جلوكوز-6-فوسفات .

قياس الفلورية

التألق هو انبعاث ضوء ذي طول موجي معين من جزيء ما بعد امتصاصه ضوءًا ذي طول موجي مختلف. تستخدم المقايسات الفلورية الفرق في تألق المادة المتفاعلة عن تألق الناتج لقياس تفاعل الإنزيم. تتميز هذه المقايسات عمومًا بحساسية أعلى بكثير من المقايسات الطيفية الضوئية، ولكنها قد تتأثر بتداخلات ناتجة عن الشوائب وعدم استقرار العديد من المركبات الفلورية عند تعرضها للضوء.

ومن الأمثلة على هذه التحليلات استخدام مرافقات الإنزيم النيوكليوتيدية NADH وNADPH. في هذه الحالة، تكون الأشكال المختزلة متألقة، بينما تكون الأشكال المؤكسدة غير متألقة. وبالتالي، يمكن تتبع تفاعلات الأكسدة بانخفاض في التألق، وتفاعلات الاختزال بزيادة فيه. [ 5 ] كما تتوفر ركائز اصطناعية تُطلق صبغة متألقة في تفاعل محفز بالإنزيم، مثل 4-ميثيل أومبيليفيريل-β-D-جالاكتوزيد لتحليل β-جالاكتوزيداز، أو 4-ميثيل أومبيليفيريل-بيوتيرات لتحليل ليباز كانديدا روغوزا . [ 6 ]

قياس السعرات الحرارية

التلألؤ الكيميائي للومينول

قياس السعرات الحرارية هو قياس الحرارة المنبعثة أو الممتصة في التفاعلات الكيميائية. وتُعدّ هذه القياسات عامة جدًا، إذ تتضمن العديد من التفاعلات تغيرًا في الحرارة، وباستخدام مقياس السعرات الحرارية الدقيق، لا يلزم سوى كمية قليلة من الإنزيم أو المادة المتفاعلة. ويمكن استخدام هذه القياسات لقياس التفاعلات التي يستحيل قياسها بأي طريقة أخرى. [ 7 ]

متألق كيميائياً

التلألؤ الكيميائي هو انبعاث الضوء الناتج عن تفاعل كيميائي. تُنتج بعض التفاعلات الإنزيمية ضوءًا، ويمكن قياس هذا الضوء للكشف عن تكوّن الناتج. تتميز هذه الأنواع من التحليلات بحساسية عالية للغاية، إذ يمكن التقاط الضوء الناتج بواسطة فيلم فوتوغرافي على مدى أيام أو أسابيع، ولكن يصعب تحديد كميته بدقة، لأنه لا يمكن رصد كل الضوء المنبعث من التفاعل.

يُعد الكشف عن بيروكسيداز الفجل باستخدام التألق الكيميائي الإنزيمي (ECL) طريقة شائعة للكشف عن الأجسام المضادة في تقنية ويسترن بلوت . ومن الأمثلة الأخرى إنزيم لوسيفيراز ، الموجود في اليراعات، والذي يُنتج الضوء بشكل طبيعي من مادة لوسيفيرين التي يعمل عليها.

تشتت الضوء

يقيس تشتت الضوء الساكن حاصل ضرب متوسط ​​الكتلة المولية وتركيز الجزيئات الكبيرة في المحلول. عند ثبات التركيز الكلي لنوع واحد أو أكثر خلال فترة القياس، تُعدّ إشارة التشتت مقياسًا مباشرًا لمتوسط ​​الكتلة المولية للمحلول، والتي تتغير مع تكوّن المعقدات أو تفككها. وبالتالي، يُحدد القياس نسبة العناصر في المعقدات، بالإضافة إلى حركيتها. تُعدّ فحوصات تشتت الضوء لحركية البروتين تقنية عامة جدًا لا تتطلب استخدام إنزيم.

الترحيل الحراري على المستوى الميكروي

تقيس تقنية الترحيل الحراري الميكروي (MST) [ 8 ] حجم وشحنة وإنتروبيا ترطيب الجزيئات/الركائز عند حالة التوازن. [ 9 ] تتغير حركة الترحيل الحراري للركيزة الموسومة بالفلورة بشكل ملحوظ عند تعديلها بواسطة إنزيم. ويمكن قياس هذا النشاط الإنزيمي بدقة زمنية عالية في الوقت الحقيقي. [ 10 ] يتميز استهلاك المواد في طريقة MST البصرية بالكامل بانخفاضه الشديد، إذ لا يتطلب الأمر سوى 5 ميكرولتر من حجم العينة و10 نانومول من تركيز الإنزيم لقياس ثوابت معدل النشاط والتثبيط الإنزيمي. وتتيح تقنية MST للمحللين قياس تعديل ركيزتين مختلفتين في آن واحد ( التحليل المتعدد ) إذا كانت كلتا الركيزتين موسومتين بفلوروفورات مختلفة. وبالتالي، يمكن إجراء تجارب تنافس الركائز.

التحليلات غير المتصلة

تُعرف التحليلات غير المستمرة بأنها تلك التي يتم فيها أخذ عينات من تفاعل إنزيمي على فترات زمنية ويتم قياس كمية إنتاج المنتج أو استهلاك الركيزة في هذه العينات.

القياس الإشعاعي

تقيس المقايسات الإشعاعية دمج النشاط الإشعاعي في المواد المتفاعلة أو إطلاقه منها. وتُعدّ النظائر المشعة الأكثر استخدامًا في هذه المقايسات هي الكربون -14 ، والفوسفور -32 ، والكبريت -35 ، واليود -125 . ونظرًا لقدرة النظائر المشعة على وسم ذرة واحدة من المادة المتفاعلة بدقة، فإن هذه المقايسات تتميز بحساسية ودقة عاليتين. وتُستخدم بكثرة في الكيمياء الحيوية، وغالبًا ما تكون الطريقة الوحيدة لقياس تفاعل محدد في المستخلصات الخام (المخاليط المعقدة من الإنزيمات الناتجة عن تحلل الخلايا).

عادة ما يتم قياس النشاط الإشعاعي في هذه الإجراءات باستخدام عداد الوميض .

الكروماتوغرافيا

تقيس التحليلات الكروماتوغرافية تكوين المنتج بفصل خليط التفاعل إلى مكوناته باستخدام الكروماتوغرافيا . ويتم ذلك عادةً باستخدام كروماتوغرافيا السائل عالي الأداء (HPLC)، ولكن يمكن أيضًا استخدام تقنية كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة الأبسط . على الرغم من أن هذه الطريقة قد تتطلب كمية كبيرة من المادة، إلا أنه يمكن زيادة حساسيتها عن طريق وسم الركائز/المنتجات بعلامة مشعة أو فلورية. كما تم تحسين حساسية التحليل أيضًا عن طريق التحول إلى بروتوكولات تستخدم أجهزة كروماتوغرافية محسّنة (مثل كروماتوغرافيا السائل فائق الضغط) التي تعمل بضغط ضخ أعلى بعدة أضعاف من أجهزة HPLC (انظر: كروماتوغرافيا السائل عالي الأداء#ضغط الضخ ). [ 11 ]

العوامل المؤثرة على التحليلات

حجرة ضغط لقياس نشاط الإنزيم تحت ضغط عالٍ

تؤثر عدة عوامل على نتيجة التحليل، وقد لخصت مراجعة حديثة المعايير المختلفة التي يجب مراقبتها للحفاظ على استمرارية التحليل وتشغيله.

تركيز الملح

لا تتحمل معظم الإنزيمات تركيزات الملح العالية للغاية، إذ تتداخل الأيونات مع الروابط الأيونية الضعيفة للبروتينات . وتكون الإنزيمات النموذجية نشطة في تركيزات ملح تتراوح بين 1 و500 ملي مولار. وكما هو معتاد ، توجد استثناءات، مثل الطحالب والبكتيريا المحبة للملوحة .

تأثيرات درجة الحرارة

تعمل جميع الإنزيمات ضمن نطاق حراري محدد لكل كائن حي. وتؤدي الزيادة في درجة الحرارة عمومًا إلى زيادة سرعة التفاعل. إلا أن هذه الزيادة محدودة، إذ تؤدي درجات الحرارة المرتفعة إلى انخفاض حاد في سرعة التفاعل. ويعود ذلك إلى تغير بنية البروتين نتيجة لتفكك الروابط الأيونية والهيدروجينية الضعيفة التي تُثبّت البنية ثلاثية الأبعاد للموقع النشط للإنزيم. [ 12 ] تتراوح درجة الحرارة "المثلى" للإنزيمات البشرية عادةً بين 35 و40 درجة مئوية. ويبلغ متوسط ​​درجة حرارة جسم الإنسان 37 درجة مئوية. وتبدأ الإنزيمات البشرية بالتغير بسرعة عند درجات حرارة أعلى من 40 درجة مئوية. أما الإنزيمات المستخلصة من العتائق المحبة للحرارة الموجودة في الينابيع الساخنة، فتكون مستقرة حتى 100 درجة مئوية. [ 13 ] ومع ذلك، فإن فكرة وجود معدل "مثلى" لتفاعل الإنزيم مضللة، لأن المعدل المُلاحظ عند أي درجة حرارة هو نتاج معدلين: معدل التفاعل ومعدل التغير. إذا استخدمت اختبارًا لقياس النشاط لمدة ثانية واحدة، فسيعطي نشاطًا عاليًا عند درجات الحرارة العالية، ولكن إذا استخدمت اختبارًا لقياس تكوين المنتج على مدار ساعة، فسيعطيك نشاطًا منخفضًا عند درجات الحرارة هذه.    

تأثيرات الرقم الهيدروجيني

معظم الإنزيمات حساسة لدرجة الحموضة (pH) ولها نطاقات نشاط محددة. ولكل منها درجة حموضة مثلى. يمكن لدرجة الحموضة أن توقف نشاط الإنزيم عن طريق تغيير بنيته ثلاثية الأبعاد بكسر الروابط الأيونية والهيدروجينية . تعمل معظم الإنزيمات بين درجة حموضة 6 و8؛ إلا أن إنزيم البيبسين في المعدة يعمل بكفاءة مثلى عند درجة حموضة 2، بينما يعمل إنزيم التربسين بكفاءة مثلى عند درجة حموضة 8.

تشبع الإنزيم

تؤدي زيادة تركيز المادة المتفاعلة إلى زيادة سرعة التفاعل (نشاط الإنزيم). مع ذلك، يحد تشبع الإنزيم من سرعة التفاعل. يصل الإنزيم إلى حالة التشبع عندما تكون المواقع النشطة لجميع الجزيئات مشغولة معظم الوقت. عند نقطة التشبع، لن يتسارع التفاعل مهما زادت كمية المادة المتفاعلة المضافة، وسيصبح منحنى سرعة التفاعل ثابتًا.

مستوى الازدحام

تؤدي الكميات الكبيرة من الجزيئات الكبيرة في المحلول إلى تغيير معدلات وثوابت التوازن لتفاعلات الإنزيم، من خلال تأثير يسمى الازدحام الجزيئي الكبير . [ 14 ]

قائمة فحوصات الإنزيمات

انظر أيضاً

مراجع

  1. لجنة التسميات التابعة للاتحاد الدولي للكيمياء الحيوية (NC-IUB) (1979). "وحدات نشاط الإنزيم" . المجلة الأوروبية للكيمياء الحيوية . 97 (2): 319-320 . doi : 10.1111/j.1432-1033.1979.tb13116.x .
  2. روليت، روس (23 نوفمبر 1998). "كم عدد؟ قاموس وحدات القياس" . تشابل هيل: جامعة نورث كارولينا . مؤرشف من الأصل في 29 أغسطس 2018.
  3. شنيل، سانتياغو؛ تشابيل، مايكل جيه؛ إيفانز، نيل دي؛ روسيل، مارك آر. (19 أكتوبر 2005). "مشكلة تمييز الآلية في الحركية الكيميائية الحيوية: تفاعل الإنزيم الواحد والركيزة الواحدة كدراسة حالة". Comptes Rendus Biologies . 329 (1): 51–61 . doi : 10.1016/j.crvi.2005.09.005 . PMID 16399643. S2CID 40456258 .  
  4. بيرغماير، هـ. يو. (1974). طرق التحليل الإنزيمي . المجلد 4. نيويورك: أكاديميك برس. الصفحات 2066-2072 . ISBN   0-89573-236-X.
  5. باسونو، جانيت ف.؛ لوري، أوليفر هـ. (1993). التحليل الإنزيمي: دليل عملي . توتوا، نيوجيرسي: دار هومانا للنشر. الصفحات 85-110 . ISBN  9780896032385.
  6. ميندين، أريان (26 يوليو 2019). "اختبار سريع ومصغر في المختبر تم تطويره لتحديد كمية نشاط إنزيم الليباز" . مجلة تثبيط الإنزيم والكيمياء الطبية . 34 (1): 1474-1480 . doi : 10.1080/14756366.2019.1651312 . PMC 6713963. PMID 31414611 .  
  7. تود، ماثيو جيه؛ غوميز، خافيير (سبتمبر 2001). "تحديد حركية الإنزيم باستخدام قياس السعرات الحرارية: اختبار عام لنشاط الإنزيم؟". الكيمياء الحيوية التحليلية . 296 (2): 179-187 . doi : 10.1006/abio.2001.5218 . PMID 11554713 . 
  8. ^ فينكن، كريستوف ج. باسكي، فيليب؛ روثباور، أولريش. براون، ديتر. دوهر ، ستيفان (19 أكتوبر 2010). "فحوصات ربط البروتين في السوائل البيولوجية باستخدام الرحلان الحراري المجهري" . اتصالات الطبيعة . 1 (1): 100. بيب كود : 2010NatCo...1..100W . دوى : 10.1038/ncomms1093 . بميد 20981028 . 
  9. دوهر، ستيفان؛ براون، ديتر (26 ديسمبر 2006). "لماذا تتحرك الجزيئات على طول تدرج درجة الحرارة؟" . وقائع الأكاديمية الوطنية للعلوم . 103 (52): 19678-19682 . Bibcode : 2006PNAS..10319678D . doi : 10.1073/pnas.0603873103 . PMC 1750914. PMID 17164337 .  
  10. أسماري، مفرح؛ ميخالكوفا، لينكا؛ إبراهيم، عادل إيهاب؛ غلاتز، زدينيك؛ واتزيغ، هيرمان؛ الديب، سامي (يوليو 2023). "دراسة التفاعلات الجزيئية عبر الفصل الكهربائي الشعيري والرحلان الحراري على المستوى الميكروي: مراجعة" . الفصل الكهربائي . 44 ( 13-14 ): 1114-1142 . doi : 10.1002/elps.202200275 . PMID 37043774 . 
  11. تشيرشويل، م؛ توادل، ن؛ ميكر، ل؛ دورج، د (25 أكتوبر 2005). "تحسين حساسية كروماتوغرافيا السائل - مطياف الكتلة من خلال زيادة الأداء الكروماتوغرافي: مقارنات بين كروماتوغرافيا السائل فائق الأداء - مطياف الكتلة الترادفي (UPLC-ES/MS/MS) وكروماتوغرافيا السائل عالي الأداء - مطياف الكتلة الترادفي (HPLC-ES/MS/MS)". مجلة الكروماتوغرافيا ب . 825 (2): 134-143 . doi : 10.1016/j.jchromb.2005.05.037 . PMID 16002352 . 
  12. دانيال، روي م.؛ بيترسون، ميشيل إي.؛ دانسون، مايكل ج.؛ برايس، نيكولاس س.؛ كيلي، شارون م.؛ مونك، كولين ر.؛ واينبرغ، كريستينا س.؛ أودشورن، ماثيو ل.؛ لي، تشارلز ك. (15 يناير 2010). "الأساس الجزيئي لتأثير درجة الحرارة على نشاط الإنزيم". مجلة الكيمياء الحيوية . 425 (2): 353-360 . doi : 10.1042/BJ20091254 . hdl : 10289/3552 . PMID 19849667 . 
  13. كوان، د.أ. (نوفمبر 1997). "البروتينات المحبة للحرارة: استقرارها ووظيفتها في المذيبات المائية والعضوية". الكيمياء الحيوية المقارنة وعلم وظائف الأعضاء، الجزء أ: علم وظائف الأعضاء . 118 (3): 429-438 . doi : 10.1016/S0300-9629(97)00004-2 . PMID 9406427 . 
  14. مينتون، ألين ب. (أبريل 2001). "تأثير الازدحام الجزيئي الكبير والحصر الجزيئي الكبير على التفاعلات الكيميائية الحيوية في الأوساط الفيزيولوجية" . مجلة الكيمياء البيولوجية . 276 (14): 10577-10580 . Bibcode : 2001JBiCh.27610577M . doi : 10.1074/jbc.R100005200 . PMID 11279227 . 
  • شعار ويكيميديا ​​كومنزالوسائط المتعلقة بتحليلات الإنزيمات على ويكيميديا ​​كومنز
  • "بروتوكولات التحليل - OpenWetWare" . OpenWetWare . مؤسسة BioBricks . تم الاطلاع عليه بتاريخ 27-07-2022 .