الكلوروفيل

الكلوروفيل على مختلف المقاييس
أوراق بلسم الليمون
الكلوروفيل مسؤول عن اللون الأخضر للعديد من النباتات والطحالب.
صورة مجهرية لخلايا نباتية، تظهر فيها البلاستيدات الخضراء على شكل كرات خضراء صغيرة.
في الخلايا النباتية والطحالب، يتركز الكلوروفيل في هياكل تسمى البلاستيدات الخضراء ، كما هو موضح في هذه الصورة المجهرية للخلايا في ورقة طحلب.
ورقة تمتص الضوء الأزرق والأحمر، لكنها تعكس الضوء الأخضر
تُرى النباتات خضراء لأن الكلوروفيل يمتص بشكل أساسي الأطوال الموجية الزرقاء والحمراء، لكن الضوء الأخضر، الذي ينعكس بواسطة تراكيب النبات مثل جدران الخلايا، يُمتص بشكل أقل. [ 1 ]
بنية الكلوروفيل د
هناك عدة أنواع من الكلوروفيل، لكن جميعها تشترك في رابطة الكلورين المغنيسيوم التي تشكل الجانب الأيمن من هذا الرسم التخطيطي.

الكلوروفيل هو مجموعة من المحفزات الكيميائية الضوئية والأصباغ الخضراء الموجودة في البكتيريا الزرقاء وفي البلاستيدات الخضراء للطحالب والنباتات . [ 2 ] يُشتق اسمه من الكلمتين اليونانيتين χλωρός ( خلوروس ، وتعني "أخضر باهت") و φύλλον ( فيلون ، وتعني "ورقة"). [ 3 ] [ 4 ] يُمكّن الكلوروفيل النباتات من امتصاص الطاقة من الضوء. وتشارك هذه الأصباغ في عملية التمثيل الضوئي الأكسجيني ، على عكس البكتيريوكلوروفيل ، وهي جزيئات مشابهة موجودة فقط في البكتيريا وتشارك في عملية التمثيل الضوئي اللاأكسجيني . [ 5 ]

تمتص الكلوروفيل الضوء بقوة في نطاقي الأزرق والأحمر من الطيف الكهرومغناطيسي . [ 6 ] في المقابل، تمتص الكلوروفيل الضوء الأخضر وما يقاربه من نطاقات الطيف بشكل ضعيف. ولذلك، تبدو الأنسجة المحتوية على الكلوروفيل خضراء اللون لأن الضوء الأخضر، الذي ينعكس بشكل منتشر بواسطة تراكيب مثل جدران الخلايا، يُمتص بشكل أقل. [ 1 ] يوجد نوعان من الكلوروفيل في الأنظمة الضوئية للنباتات الخضراء: الكلوروفيل أ والكلوروفيل ب . [ 7 ]

تاريخ

عُزلت مادة الكلوروفيل لأول مرة وسُميت بهذا الاسم على يد جوزيف بيناميه كافينتو وبيير جوزيف بيليتييه عام 1817. [ 3 ] واكتُشف وجود المغنيسيوم في الكلوروفيل عام 1906، [ 8 ] وكان هذا أول اكتشاف لهذا العنصر في الأنسجة الحية. [ 9 ]

بعد العمل الأولي الذي قام به الكيميائي الألماني ريتشارد ويلشتاتر بين عامي 1905 و1915، تم توضيح البنية العامة للكلوروفيل أ بواسطة هانز فيشر في عام 1940. وبحلول عام 1960، عندما كانت معظم الكيمياء الفراغية للكلوروفيل أ معروفة، نشر روبرت بيرنز وودوارد توليفًا كاملاً للجزيء. [ 9 ] [ 10 ] في عام 1967، أكمل إيان فليمنج آخر توضيح متبقٍ للكيمياء الفراغية ، [ 11 ] وفي عام 1990 نشر وودوارد وزملاؤه توليفًا محدثًا. [ 12 ] أُعلن عن وجود الكلوروفيل و في البكتيريا الزرقاء والكائنات الحية الدقيقة الأخرى المنتجة للأكسجين التي تشكل الستروماتوليت في عام 2010؛ [ 13 ] [ 14 ] تم استنتاج الصيغة الجزيئية C55H70O6N4Mg وبنية (2-فورميل)-كلوروفيل أ بناءً على أطياف الرنين النووي المغناطيسي والأطياف الضوئية وأطياف الكتلة . [ 15 ]

عملية التمثيل الضوئي

أطياف الامتصاص للكلوروفيل الحر أ ( أزرق ) وب ( أحمر ) في مذيب. تتغير أطياف جزيئات الكلوروفيل قليلاً في الجسم الحي تبعاً لتفاعلات محددة بين الصبغة والبروتين.  
  الكلوروفيل أ 
  الكلوروفيل ب 

الكلوروفيل ضروري لعملية التمثيل الضوئي ، مما يسمح للنباتات بامتصاص الطاقة من الضوء . [ 16 ]

تترتب جزيئات الكلوروفيل داخل وحول الأنظمة الضوئية المدمجة في أغشية الثايلاكويد للبلاستيدات الخضراء . [ 17 ] في هذه المركبات، يؤدي الكلوروفيل ثلاث وظائف:

  1. تتمثل وظيفة الغالبية العظمى من الكلوروفيل (حتى عدة مئات من الجزيئات لكل نظام ضوئي) في امتصاص الضوء.
  2. وبعد القيام بذلك، تقوم هذه المراكز نفسها بتنفيذ وظيفتها الثانية: نقل تلك الطاقة عن طريق نقل طاقة الرنين إلى زوج محدد من الكلوروفيل في مركز التفاعل الخاص بالأنظمة الضوئية.
  3. يقوم هذا الزوج المحدد بالوظيفة النهائية للكلوروفيل: فصل الشحنات، مما ينتج عنه البروتونات غير المرتبطة (H + ) والإلكترونات (e ) التي تدفع عملية التخليق الحيوي بشكل منفصل.

الوحدتان المقبولتان حاليًا للنظام الضوئي هما النظام الضوئي الأول والنظام الضوئي الثاني ، ولكل منهما مركز تفاعل خاص به، يُسمى P700 و P680 على التوالي. سُميت هذه المراكز نسبةً إلى الطول الموجي ( بالنانومتر ) لذروة امتصاصها الحمراء القصوى. تختلف هوية ووظيفة وخصائص طيف أنواع الكلوروفيل في كل نظام ضوئي، وتتحدد هذه الخصائص من خلال بعضها البعض ومن خلال بنية البروتين المحيطة بها.

تتمثل وظيفة مركز تفاعل الكلوروفيل في امتصاص طاقة الضوء ونقلها إلى أجزاء أخرى من النظام الضوئي. تُنقل طاقة الفوتون الممتصة إلى إلكترون في عملية تُسمى فصل الشحنات. يُعدّ انتزاع الإلكترون من الكلوروفيل تفاعل أكسدة. يتبرع الكلوروفيل بالإلكترون عالي الطاقة إلى سلسلة من المركبات الجزيئية الوسيطة تُسمى سلسلة نقل الإلكترون . ثم يُختزل مركز تفاعل الكلوروفيل المشحون (P680 + ) إلى حالته الأرضية باستقبال إلكترون مُنتزع من الماء. يأتي الإلكترون الذي يُختزل P680 + في النهاية من أكسدة الماء إلى O2 و H + عبر عدة مركبات وسيطة. هذا التفاعل هو الطريقة التي تُنتج بها الكائنات الحية التي تقوم بعملية التمثيل الضوئي، مثل النباتات، غاز O2 ، وهو مصدر جميع جزيئات O2 تقريبًا في الغلاف الجوي للأرض.  يعمل النظام الضوئي الأول عادةً بالتسلسل مع النظام الضوئي  الثاني. وبالتالي، فإن P700 + الخاص بالنظام الضوئي  الأول عادة ما يتم اختزاله أثناء استقباله للإلكترون، عبر العديد من الوسائط في غشاء الثايلاكويد، بواسطة الإلكترونات القادمة في النهاية من النظام الضوئي  الثاني. ومع ذلك، فإن تفاعلات نقل الإلكترون في أغشية الثايلاكويد معقدة، ويمكن أن يختلف مصدر الإلكترونات المستخدمة لاختزال P700 + .

يُستخدم تدفق الإلكترونات الناتج عن أصباغ الكلوروفيل في مركز التفاعل لضخ أيونات الهيدروجين عبر غشاء الثايلاكويد، مما يُنشئ قوة دافعة بروتونية وجهدًا كيميائيًا أسموزيًا يُستخدم بشكل أساسي في إنتاج الأدينوسين ثلاثي الفوسفات ( ATP ) (الطاقة الكيميائية المخزنة) أو لاختزال NADP + إلى NADPH . يُعد NADPH عاملًا عامًا يُستخدم لاختزال ثاني أكسيد الكربون إلى سكريات، بالإضافة إلى تفاعلات التخليق الحيوي الأخرى.

تستطيع معقدات الكلوروفيل-البروتين في مركز التفاعل امتصاص الضوء مباشرةً وإجراء عمليات فصل الشحنات دون مساعدة أصباغ الكلوروفيل الأخرى، إلا أن احتمال قيام جزيء كلوروفيل واحد بذلك تحت شدة إضاءة معينة ضئيل. لذا، تعمل جميع أنواع الكلوروفيل الأخرى في النظام الضوئي وبروتينات صبغة الهوائي بشكل تعاوني على امتصاص طاقة الضوء وتوجيهها إلى مركز التفاعل. إلى جانب الكلوروفيل أ ، توجد أصباغ أخرى، تُسمى الأصباغ المساعدة ، في هذه المعقدات الصبغية-البروتينية الهوائية. تُكمل هذه الأصباغ عمل الكلوروفيل بامتصاص الفوتونات ذات الأطوال الموجية خارج نطاق امتصاص الكلوروفيل الضيق، وتُزوّد ​​النظام الضوئي بإلكترونات إضافية. يُعتقد أن تطور الإنزيمات المنتجة للكلوروفيل قد حدث قبل 2.3 مليار سنة. [ 18 ] 

التركيب الكيميائي

نموذج ملء الفراغ لجزيء الكلوروفيل أ 

تُعرف عدة أنواع من الكلوروفيل. تُعرَّف جميعها بأنها مشتقات من الكلورين الأصلي لوجود حلقة خامسة تحتوي على الكيتون بعد الحلقات الأربع الشبيهة بالبيرول. تُصنَّف معظم أنواع الكلوروفيل على أنها كلورينات ، وهي مركبات مُختزلة قريبة من البورفيرينات (الموجودة في الهيموجلوبين ). تشترك الكلوروفيلات مع البورفيرينات في مسار حيوي واحد، بما في ذلك المركب الأولي يوروبورفيرينوجين III . على عكس الهيمات، التي تحتوي على الحديد المرتبط بمركز N4، ترتبط معظم أنواع الكلوروفيل بالمغنيسيوم . غالبًا ما تُحذف الروابط المحورية المتصلة بمركز Mg2 + للتوضيح. ترتبط بحلقة الكلورين سلاسل جانبية متنوعة، تتضمن عادةً سلسلة فيتيل طويلة (C20H39O ) . يُعد الكلوروفيل أ الشكل الأكثر انتشارًا في النباتات الأرضية . يحتوي الكلوروفيل أ على مجموعة ميثيل بدلًا من مجموعة الفورميل الموجودة في الكلوروفيل ب . يؤثر هذا الاختلاف على طيف الامتصاص، مما يسمح للنباتات بامتصاص جزء أكبر من الضوء المرئي.

يتم تلخيص هياكل الكلوروفيل أدناه: [ 19 ] [ 20 ]

الكلوروفيل أالكلوروفيل بالكلوروفيل ج 1الكلوروفيل ج 2الكلوروفيل ج 3الكلوروفيل دالكلوروفيل f [ 15 ]
الصيغة الجزيئيةC 55 H 72 MgN 4 O 5C 55 H 70 MgN 4 O 6C 35 H 30 MgN 4 O 5C 35 H 28 MgN 4 O 5C 36 H 28 MgN 4 O 7C 54 H 70 MgN 4 O 6C 55 H 70 MgN 4 O 6
المجموعة C2−CH 3−CH 3−CH 3−CH 3−CH 3−CH 3-CHO
مجموعة C3−CH=CH 2−CH=CH 2−CH=CH 2−CH=CH 2−CH=CH 2-CHO−CH=CH 2
المجموعة C7−CH 3-CHO−CH 3−CH 3- كوتش 3−CH 3−CH 3
المجموعة C8−CH 2 CH 3−CH 2 CH 3−CH 2 CH 3−CH=CH 2−CH=CH 2−CH 2 CH 3−CH 2 CH 3
مجموعة C17−CH 2 CH 2 COO−فيتيل−CH 2 CH 2 COO−فيتيل−CH=CHCOOH−CH=CHCOOH−CH=CHCOOH−CH 2 CH 2 COO−فيتيل−CH 2 CH 2 COO−فيتيل
رابطة C17-C18أحادي (كلورين)أحادي (كلورين)مزدوج (بورفيرين)مزدوج (بورفيرين)مزدوج (بورفيرين)أحادي (كلورين)أحادي (كلورين)
حدوثعالميمعظمها نباتاتأنواع مختلفة من الطحالبأنواع مختلفة من الطحالبإميليانيا هوكسلي [ 21 ]البكتيريا الزرقاءالبكتيريا الزرقاء

يُستخدم مصطلح الكلوروفيل e لوصف صبغة تم استخلاصها من الطحالب عام 1966، ولكن لم يتم وصفها كيميائيًا. إلى جانب أنواع الكلوروفيل المذكورة في الأحرف، تُعرف في الطبيعة مجموعة واسعة من التعديلات على السلاسل الجانبية لبنية الكلوروفيل. على سبيل المثال، تستخدم بكتيريا البروكلوروكوكس الزرقاء الكلوروفيل a و b فينيل 8. [ 22 ]

قياس محتوى الكلوروفيل

يشكل الكلوروفيل محاليل خضراء داكنة في المذيبات العضوية.

يمكن استخلاص الكلوروفيل من البروتين باستخدام المذيبات العضوية. [ 23 ] [ 24 ] [ 25 ] وبهذه الطريقة، يمكن تقدير تركيز الكلوروفيل داخل الورقة. [ 26 ] كما توجد طرق لفصل الكلوروفيل أ والكلوروفيل ب .

في ثنائي إيثيل الإيثر ، يبلغ امتصاص الكلوروفيل أ ذروته عند 430  نانومتر و662  نانومتر تقريبًا، بينما يبلغ امتصاص الكلوروفيل ب  ذروته عند 453 نانومتر و642  نانومتر تقريبًا. [ 27 ] تقع ذروتا امتصاص الكلوروفيل أ عند 465  نانومتر و665  نانومتر. ويتألق الكلوروفيل أ عند 673 نانومتر (ذروة) و726 نانومتر. يتجاوز معامل الامتصاص المولي للكلوروفيل أ 10⁵ مول⁻¹ سم⁻¹ ، وهو من أعلى القيم للمركبات العضوية ذات الجزيئات الصغيرة. [ 28 ] في محلول الأسيتون والماء بنسبة 90%، تبلغ أطوال موجات امتصاص الكلوروفيل أ ذروتها عند 430 نانومتر و664 نانومتر. تبلغ قمم الكلوروفيل ب 460 نانومتر و647 نانومتر؛ وتقع قمم الكلوروفيل ج 1 عند 442 نانومتر و630 نانومتر؛ وتقع قمم الكلوروفيل ج 2 عند 444 نانومتر و630 نانومتر؛ وتقع قمم الكلوروفيل د عند 401 نانومتر و455 نانومتر و696 نانومتر. [ 29 ]               

يمكن استخدام نسبة انبعاث الفلورة لقياس محتوى الكلوروفيل. من خلال إثارة فلورة الكلوروفيل أ عند طول موجي أقصر، يتم حساب نسبة انبعاث فلورة الكلوروفيل عند705 ± 10  نانومتر ويمكن أن يوفر الطول الموجي 735 ± 10  نانومتر علاقة خطية لمحتوى الكلوروفيل عند مقارنته بالاختبارات الكيميائية. وقد أظهرت النسبة F 735 / F 700 قيمة ارتباط r² تساوي 0.96 مقارنةً بالاختبارات الكيميائية في نطاق يتراوح بين 41 و 675 ملغم /  م² . كما طور جيتلسون صيغةً للقراءة المباشرة لمحتوى الكلوروفيل بوحدة ملغم / م² . وقد وفرت هذه الصيغة طريقةً موثوقةً لقياس محتوى الكلوروفيل ضمن نطاق يتراوح بين 41 و 675 ملغم / م² ، بقيمة ارتباطتساوي 0.95 . [ 30 ]        

كما يمكن تقدير تركيز الكلوروفيل بقياس نفاذية الضوء عبر أوراق النبات. [ 31 ] ويتيح تقييم محتوى الكلوروفيل في الأوراق باستخدام أجهزة استشعار بصرية مثل Dualex وSPAD للباحثين إجراء قياسات فورية وغير مدمرة. [ 32 ] [ 33 ] وتشير الأبحاث إلى وجود ارتباط إيجابي بين هذه الطرق والقياسات المختبرية للكلوروفيل. [ 34 ]

التخليق الحيوي

في بعض النباتات، يُشتق الكلوروفيل من الغلوتامات ويتم تصنيعه عبر مسار حيوي متفرع مشترك مع الهيم والسيروهيم . [ 35 ] [ 36 ] [ 37 ] إنزيم سينثاز الكلوروفيل [ 38 ] هو الإنزيم الذي يُكمل عملية التخليق الحيوي للكلوروفيل أ : [ 39 ] [ 40 ]

كلوروفيليد أ + فيتيل ثنائي الفوسفات{\displaystyle \rightleftharpoons }الكلوروفيل أ + ثنائي الفوسفات

يُشكّل هذا التحويل إسترًا لمجموعة حمض الكربوكسيل في الكلوروفيليد أ مع كحول الفيتول ثنائي التربين ذي العشرين ذرة كربون . يُصنع الكلوروفيل ب بواسطة نفس الإنزيم الذي يعمل على الكلوروفيليد ب . وينطبق الأمر نفسه على الكلوروفيل د والكلوروفيل و ، حيث يُصنع كلاهما من الكلوروفيليدات المقابلة التي تُصنع بدورها من الكلوروفيليد أ . [ 41 ]

في النباتات المزهرة ، تعتمد المراحل الأخيرة من مسار التخليق الحيوي على الضوء. وتكون هذه النباتات شاحبة اللون ( مصفرّة ) إذا نمت في الظلام. أما النباتات اللاوعائية والطحالب الخضراء، فلديها إنزيم إضافي لا يعتمد على الضوء، وتنمو خضراء حتى في الظلام. [ 42 ]

يرتبط الكلوروفيل بالبروتينات . يوجد بروتوكلوروفيليد ، أحد المركبات الوسيطة في عملية التخليق الحيوي، في الغالب بشكل حر، ويعمل في ظروف الإضاءة كمحسس ضوئي ، مكونًا جذورًا حرة قد تكون سامة للنبات. لذا، تنظم النباتات كمية هذا المركب الأولي للكلوروفيل. في كاسيات البذور، يتم هذا التنظيم عند حمض أمينوليفولينيك (ALA)، وهو أحد المركبات الوسيطة في مسار التخليق الحيوي. تتراكم مستويات عالية وسامة من بروتوكلوروفيليد في النباتات التي تتغذى على حمض أمينوليفولينيك، وكذلك في الطفرات التي تعاني من خلل في النظام التنظيمي. [ 43 ]

الشيخوخة ودورة الكلوروفيل

تتضمن عملية شيخوخة النبات تحلل الكلوروفيل: فعلى سبيل المثال، يقوم إنزيم الكلوروفيلاز ( EC 3.1.1.14 ) بتحليل السلسلة الجانبية للفيتيل لعكس التفاعل الذي يتم فيه تصنيع الكلوروفيل حيويًا من الكلوروفيليد أ أو ب . وبما أن الكلوروفيليد أ يمكن تحويله إلى الكلوروفيليد ب، ويمكن إعادة أسترة الأخير إلى الكلوروفيل ب ، فإن هذه العمليات تسمح بدورة بين الكلوروفيل أ و ب . علاوة على ذلك، يمكن اختزال الكلوروفيل ب مباشرةً (عبر 7،1 - هيدروكسي كلوروفيل أ ) إلى الكلوروفيل أ ، مُكملاً بذلك الدورة. [ 44 ] [ 45 ] في المراحل اللاحقة من الشيخوخة، تتحول الكلوروفيليدات إلى مجموعة من رباعيات البيرول عديمة اللون تُعرف باسم نواتج تحلل الكلوروفيل غير المتألقة (NCC)، ولها التركيب العام التالي:

نواتج تحلل الكلوروفيل غير المتألقة

وقد تم تحديد هذه المركبات أيضاً في الفواكه الناضجة. [ 45 ] [ 46 ]

توزيع

تُظهر خرائط الكلوروفيل للفترة من 2002 إلى 2024، والمقدمة من وكالة ناسا ، كمية الكلوروفيل بالمليغرام لكل متر مكعب من مياه البحر شهريًا. [ 47 ] المناطق ذات مستويات الكلوروفيل المنخفضة جدًا، والتي تشير إلى أعداد قليلة جدًا من العوالق النباتية ، مُلوّنة باللون الأزرق. أما المناطق ذات تركيزات الكلوروفيل العالية، والتي تعني نمو أعداد كبيرة من العوالق النباتية، فهي مُلوّنة باللون الأصفر. هذه البيانات مُستقاة من جهاز التصوير الطيفي متوسط ​​الدقة (MODIS) الموجود على متن قمر ناسا الصناعي "أكوا". اليابسة مُلوّنة باللون الرمادي الداكن، والمناطق التي لم يتمكن جهاز MODIS من جمع البيانات فيها بسبب الجليد البحري أو الظلام القطبي أو الغيوم مُلوّنة باللون الرمادي الفاتح. أعلى تركيزات الكلوروفيل، حيث توجد النباتات البحرية السطحية الدقيقة، تقع في المياه القطبية الباردة أو في المناطق التي تجلب فيها التيارات المحيطية المياه الباردة إلى السطح، مثل المناطق المحيطة بخط الاستواء وعلى طول سواحل القارات. ليست المياه الباردة بحد ذاتها هي التي تُحفّز نمو العوالق النباتية. بدلاً من ذلك، غالباً ما تكون درجات الحرارة المنخفضة علامة على صعود المياه إلى السطح من أعماق المحيط، حاملةً معها العناصر الغذائية التي تراكمت عبر الزمن. في المياه القطبية، تتراكم العناصر الغذائية في المياه السطحية خلال أشهر الشتاء المظلمة عندما لا تستطيع النباتات النمو. وعندما تعود أشعة الشمس في الربيع والصيف، تزدهر النباتات بتركيزات عالية. [ 47 ]

الاستخدامات

فنون الطهي

الكلوروفيل مُسجّل كمُلوّن غذائي، ورقم E الخاص به هو E140 . [ 48 ] يستخدم الطهاة الكلوروفيل لتلوين العديد من الأطعمة والمشروبات باللون الأخضر، مثل المعكرونة والمشروبات الروحية. يكتسب الأفسنتين لونه الأخضر طبيعيًا من الكلوروفيل المُضاف إليه من خلال مجموعة واسعة من الأعشاب المُستخدمة في إنتاجه. [ 49 ] الكلوروفيل غير قابل للذوبان في الماء، [ 50 ] ويُخلط أولًا بكمية قليلة من الزيت النباتي للحصول على المحلول المطلوب .

في مجال التسويق

في الفترة ما بين عامي 1950 و1953 تحديدًا، استُخدم الكلوروفيل كأداة تسويقية للترويج لمعجون الأسنان والفوط الصحية والصابون وغيرها من المنتجات. استند هذا إلى ادعاءات بأنه يحجب الروائح الكريهة - وهي نتيجة توصل إليها بحث أجراه ف. هوارد ويستكوت في أربعينيات القرن العشرين - وقد دفعت القيمة التجارية لهذه الخاصية في الإعلانات العديد من الشركات إلى ابتكار علامات تجارية تحتوي على هذا المركب. مع ذلك، سرعان ما تبيّن أن الضجة المُثارة حول الكلوروفيل لم تكن مُبررة، بل إن البحث الذي استندت إليه ربما كان خدعة. ونتيجة لذلك، توقفت العلامات التجارية عن استخدامه سريعًا. في عشرينيات القرن الحادي والعشرين، عاد الكلوروفيل ليصبح موضوعًا لادعاءات طبية لا أساس لها من الصحة، حيث روّج له المؤثرون على وسائل التواصل الاجتماعي على شكل "ماء الكلوروفيل"، على سبيل المثال. [ 51 ]

انظر أيضاً

مراجع

  1. 1 2 فيرتانين أو، كونستانتينيدو إي، تيستيرفي إي (أكتوبر 2022). "الكلوروفيل لا يعكس الضوء الأخضر - كيفية تصحيح مفهوم خاطئ" . مجلة التعليم البيولوجي . 56 (5): 552-559 . doi : 10.1080/00219266.2020.1858930 .
  2. مايو ب (مايو 2000). "الكلوروفيل" . جزيء الشهر . جامعة بريستول .
  3. 1 2 انظر:
    • ديليبين إم [بالفرنسية] (سبتمبر 1951). “جوزيف بيليتييه وجوزيف كافينتو”. مجلة التعليم الكيميائي . 28 (9): 454. بيب كود : 1951JChEd..28..454D . دوى : 10.1021/ed028p454 .
    • بيليتييه بي جيه، كافينتو جيه بي (1817). "Notice sur la matière verte des feuilles" [ ملاحظة حول المادة الخضراء في الأوراق ] . مجلة الصيدلة (باللغة الفرنسية). 3 : 486 - 491.على ص. 490، يقترح المؤلفون اسمًا جديدًا للكلوروفيل. من ص. 490: "لا يجوز لنا أن نسمي مادة ما بعد درجات حرارة طويلة، ومن خلال تاريخنا الذي نتبعه في بعض الأشياء؛ مقترحات جديدة، بدون أي أهمية، اسم الكلوروفيل ، الكلور ، اللون، وما إلى ذلك " " """"""""""""""""""""""""""""""""  """"""""""""""""""" (ليس لدينا الحق في تسمية مادة معروفة منذ زمن طويل، ولم نضف إلى قصتها سوى القليل من الحقائق؛ ومع ذلك، سنقترح، دون إعطائها أي أهمية، اسم الكلوروفيل ، من chloros ، لون، و φύλλον ، ورقة  : هذا الاسم سيشير إلى الدور الذي تلعبه في الطبيعة.)
  4. "الكلوروفيل" . قاموس أصل الكلمات على الإنترنت .
  5. أودايانغاني س (31 مارس 2020). "الفرق بين البكتيريوكلوروفيل والكلوروفيل" . differencebetween.com .
  6. منير س، كيم إي جيه، بارك جيه إس، لي جيه إتش (مارس 2014). "تأثير الثنائيات الباعثة للضوء الأخضر والأحمر والأزرق على بروتينات معقدات متعددة البروتينات والنشاط الضوئي تحت شدة إضاءة متفاوتة في أوراق الخس (Lactuca sativa L.)" . المجلة الدولية للعلوم الجزيئية . 15 (3): 4657-70 . doi : 10.3390/ijms15034657 . PMC 3975419. PMID 24642884 .  
  7. سبير، بي آر (1997). "أصباغ التمثيل الضوئي" . معجم UCMP (عبر الإنترنت) . متحف علم الأحياء القديمة بجامعة كاليفورنيا . تم الاطلاع عليه بتاريخ 17 يوليو 2010 .
  8. ^ ويلستاتر ر (1906). "Zur Kenntniss der Zusammensetzung des Chlorophylls" [ مساهمة في معرفة تركيب الكلوروفيل ] . أنالين دير كيمي (في المانيا). 350 ( 1 – 2): 48 – 82. دوى : 10.1002/jlac.19063500103 . من ص. 49: "ينتج منتج التحلل المائي القلوي من القلويات. في مجمعات المغنيسيوم التي يتم ربطها، فإن المعدن في أحد القلويات يكون أكثر ارتفاعًا في درجة حرارة السوق على نطاق أوسع." (تشكل أملاح القلويات الخضراء الداكنة المنتج الرئيسي للتحلل المائي القلوي. وتوجد فيها مركبات المغنيسيوم المعقدة، والتي تحتوي على المعدن في رابطة مقاومة بشكل استثنائي للقلويات حتى في درجات الحرارة العالية.)
  9. 1 2 موتيلفا إم جيه (2008). "الكلوروفيل - من وظيفته في الغذاء إلى أهميته الصحية". المؤتمر الخامس للأصباغ في الغذاء - من أجل الجودة والصحة (مطبوع). جامعة هلسنكي. ISBN  978-952-10-4846-3.
  10. وودوارد، آر. بي.، آير، دبليو. إيه.، بيتون، جيه. إم.، بيكلهاوبت، إف.، بونيت، آر.، بوخشاشر، بي.، وآخرون . (يوليو 1960). "التخليق الكلي للكلوروفيل" (ملف PDF) . مجلة الجمعية الكيميائية الأمريكية . 82 (14): 3800-3802 . رمز Bibcode : 1960JAChS..82.3800W . doi : 10.1021/ja01499a093 . مؤرشف (ملف PDF) من الأصل بتاريخ 10 أبريل 2011. 
  11. فليمنج، آي (14 أكتوبر 1967). "التكوين المطلق وبنية الكلوروفيل". مجلة نيتشر . 216 (5111): 151-152 . Bibcode : 1967Natur.216..151F . doi : 10.1038/216151a0 . S2CID 4262313 . 
  12. وودوارد آر بي، آير دبليو إيه، بيتون جي إم، بيكلهاوبت إف، بونيت آر، بوششاشر بي، وآخرون . (1990). "التخليق الكلي للكلوروفيل أ ". رباعي الاسطح . 46 (22): 7599– 7659. بيب كود : 1990Tetra..46.7599W . دوى : 10.1016/0040-4020(90)80003-Z . 
  13. جبر ف (أغسطس 2010). "شكل جديد من الكلوروفيل؟" . مجلة ساينتفك أمريكان .
  14. "الكلوروفيل بالأشعة تحت الحمراء قد يعزز أداء الخلايا الشمسية" . مجلة نيو ساينتست . 19 أغسطس 2010. تم الاطلاع عليه بتاريخ 15 أبريل 2012 .
  15. 1 2 تشين إم، شليب إم، ويلوز آر دي، كاي زد إل، نيلان بي إيه، شير إتش (سبتمبر 2010). "كلوروفيل ذو انزياح أحمر". مجلة ساينس . 329 (5997): 1318-1319 . رمز Bibcode : 2010Sci...329.1318C . doi : 10.1126/science.1191127 . PMID 20724585. S2CID 206527174 .  
  16. كارتر جيه إس (1996). "التمثيل الضوئي" . جامعة سينسيناتي . مؤرشف من الأصل في 29-06-2013.
  17. "التمثيل الضوئي، البلاستيدات الخضراء | تعلم العلوم على موقع Scitable" . www.nature.com . تاريخ الاسترجاع: 19 أكتوبر 2024 .
  18. توميتاني أ، كنول أ.هـ، كافانو س.م، أونو ت (أبريل 2006). "التنوع التطوري للبكتيريا الزرقاء: منظورات جزيئية-وراثية وأخرى أحفورية" . وقائع الأكاديمية الوطنية للعلوم في الولايات المتحدة الأمريكية . 103 (14): 5442-5447 . Bibcode : 2006PNAS..103.5442T . doi : 10.1073/pnas.0600999103 . PMC 1459374. PMID 16569695 .  
  19. شير، هـ. (2006). "نظرة عامة على الكلوروفيل والبكتيريوكلوروفيل: الكيمياء الحيوية، والفيزياء الحيوية، والوظائف، والتطبيقات". الكلوروفيل والبكتيريوكلوروفيل . التقدم في عملية التمثيل الضوئي والتنفس. المجلد 25. الصفحات 1-26. doi : 10.1007 / 1-4020-4516-6_1 . ISBN   978-1-4020-4515-8.
  20. تانيغوتشي م، ليندسي جيه إس (يناير 2017). "الكلورينات الاصطناعية، بدائل محتملة للكلوروفيل، مُحضّرة عن طريق اشتقاق البورفيرينات". مراجعات كيميائية . 117 (2): 344-535 . doi : 10.1021/acs.chemrev.5b00696 . OSTI 1534468. PMID 27498781 .  
  21. فوكس سي جيه، جيفري إس دبليو (1989). "بنية الكلوروفيل سي 3 ، صبغة ضوئية بحرية جديدة". مجلة الجمعية الكيميائية، الاتصالات الكيميائية (23): 1827-28 . doi : 10.1039/C39890001827 .
  22. تشين م (2019). "الكلوروفيل د و ف: التخليق، والوجود، وحصاد الضوء، وتنظيم الصبغة في معقدات البروتين الرابطة للكلوروفيل". التقدم في البحوث النباتية . 90 : 121-139 . doi : 10.1016/bs.abr.2019.03.006 . ISBN 9780081027523. S2CID 149632511 . 
  23. ماركر، أ. ف. (1972). "استخدام الأسيتون والميثانول في تقدير الكلوروفيل في وجود الفايوفيتين في النبات". بيولوجيا المياه العذبة . 2 (4): 361-385 . doi : 10.1111/j.1365-2427.1972.tb00377.x .
  24. جيفري إس دبليو، شيباتا (فبراير 1969). "بعض الخصائص الطيفية للكلوروفيل ج من زوزانثيلا ترايداكنا كروكا" . النشرة البيولوجية . 136 (1): 54-62 . Bibcode : 1969BiolB.136...54J . doi : 10.2307/1539668 . JSTOR 1539668 . 
  25. جيلبين، ل. (21 مارس 2001). "طرق تحليل صبغة التمثيل الضوئي القاعية" . كلية علوم الحياة، جامعة نابير . مؤرشف من الأصل في 14 أبريل 2008. تم الاطلاع عليه في 17 يوليو 2010 .
  26. كيت تي إم، بيركنز تي دي (أكتوبر 2003). "رصد محتوى الكلوروفيل في القيقب السكري (Acer saccharum)" . فسيولوجيا الأشجار . 23 (15): 1077-1079 . doi : 10.1093/treephys/23.15.1077 . PMID 12975132 . 
  27. غروس ج (1991). أصباغ الخضراوات: الكلوروفيل والكاروتينات . فان نوستراند رينهولد. ISBN 978-0442006570.
  28. بورا آر جيه، طومسون دبليو إيه، كريدمان بي إي (1989). "تحديد معاملات الامتصاص الدقيقة والمعادلات الآنية لتحليل الكلوروفيل أ و ب المستخلص بأربعة مذيبات مختلفة: التحقق من تركيز معايير الكلوروفيل بواسطة مطيافية الامتصاص الذري". بيوشيميكا إت بيوفيزيكا أكتا (BBA) - بيوينرجيتكس . 975 (3): 384-394 . doi : 10.1016/S0005-2728(89)80347-0 .
  29. لاركوم، أ. و.، دوغلاس، س.، رافين، ج. أ.، محرران. (2003). عملية التمثيل الضوئي في الطحالب . لندن: كلوير. ISBN 978-0-7923-6333-0.
  30. ↑ جيتلسون ، أ.أ.، بوشمان ، س.، ليشتنثالر، هـ.ك. (1999). "نسبة فلورة الكلوروفيل F735 / F700 كمقياس دقيق لمحتوى الكلوروفيل في النباتات". الاستشعار عن بعد للبيئة. 69 ( 3): 296-302 . Bibcode : 1999RSEnv..69..296G . doi : 10.1016/S0034-4257(99)00023-1 .
  31. نجم، أ. أ.، كاشاني، أ.، باك نجاد، ف.، أردكاني، م. ر.، هادي، م. ر. (2015). "استخدام طرق الاختبار الميداني السريع لتقييم حالة النيتروجين في غطاء نبات البطاطس في وجود الأسمدة النيتروجينية العضوية وغير العضوية" (ملف PDF) . المجلة الدولية لعلوم الحياة المتقدمة . 8 (3): 328-339 . ISSN 2320-1827 . 
  32. سيروفيتش، ز. ج. (أكتوبر 2012). "مجسات قريبة جديدة للنباتات: نحو تقدير كمي غير مدمر لمكونات النبات" (ملف PDF) . إيبرنبورغ. مؤرشف من الأصل (ملف PDF) بتاريخ 22 أغسطس 2014. تم الاطلاع عليه بتاريخ 12 يوليو 2024 .
  33. هوان يو، هوا سونغ وو، تشي جي وا (2010). "تقييم جهازي SPAD وDualex لتقدير حالة النيتروجين في الذرة خلال موسم النمو". مجلة أكتا أغرونوميكا سينيكا . 36 (5): 840-847 . doi : 10.1016/S1875-2780(09)60051-1 . ISSN 1875-2780 . 
  34. فوس ج، بوم هـ (1993). "مقياس الكلوروفيل المحمول باليد: أداة واعدة لتقييم حالة النيتروجين في أوراق البطاطس". بحوث البطاطس . 36 (4): 301-308 . doi : 10.1007/BF02361796 .
  35. باترسبي، أ. ر. (ديسمبر 2000). "رباعي البيرول: أصباغ الحياة". تقارير المنتجات الطبيعية . 17 (6): 507-26 . doi : 10.1039/B002635M . PMID 11152419 . 
  36. أختار م (2007). "تعديل السلاسل الجانبية للأسيتات والبروبيونات أثناء التخليق الحيوي للهيم والكلوروفيل: دراسات آلية وكيميائية فراغية". ندوة مؤسسة سيبا 180 - التخليق الحيوي لأصباغ التترا بيرول . ندوات مؤسسة نوفارتس. المجلد 180. الصفحات 131-155 . doi : 10.1002/9780470514535.ch8 . ISBN   9780470514535PMID 7842850 
  37. ويلوز، آر. دي. (يونيو 2003). "التخليق الحيوي للكلوروفيل من بروتوبورفيرين IX". تقارير المنتجات الطبيعية . 20 (3): 327-341 . doi : 10.1039/B110549N . PMID 12828371 . 
  38. شميد، هـ. س.، راسادينا، ف.، أوستر، يو.، شوخ، س.، روديجر، و. (نوفمبر 2002). " التحميل المسبق لإنزيم كلوروفيل سينثاز بثنائي فوسفات رباعي البرينيل خطوة إلزامية في التخليق الحيوي للكلوروفيل" (ملف PDF) . الكيمياء الحيوية . 383 (11): 1769-1778 . doi : 10.1515/BC.2002.198 . PMID 12530542. S2CID 3099209 .  
  39. إيكهارت يو، غريم بي، هورتنستاينر إس (سبتمبر 2004). "التطورات الحديثة في التخليق الحيوي للكلوروفيل وتحلله في النباتات العليا" . بيولوجيا النبات الجزيئية . 56 (1): 1-14 . Bibcode : 2004PMolB..56....1E . doi : 10.1007/s11103-004-2331-3 . PMID 15604725. S2CID 21174896 .  
  40. بوليفار ، د. و. (نوفمبر 2006). "التطورات الحديثة في التخليق الحيوي للكلوروفيل". أبحاث التمثيل الضوئي . 90 (2): 173-194 . doi : 10.1007/s11120-006-9076-6 . PMID 17370354. S2CID 23808539 .  
  41. ^ تسوزوكي واي، تسوكاتاني واي، ياماكاوا إتش، إيتو إس، فوجيتا واي، ياماموتو إتش (مارس 2022). "تأثيرات الضوء والأكسجين على التخليق الحيوي للكلوروفيل د في البكتيريا الزرقاء البحرية Acaryoكلور is Marina " . النباتات . 11 (7): 915. بيب كود : 2022Plnts..11..915T . دوى : 10.3390 / النباتات11070915 . بمك 9003380 . بميد 35406896 .   
  42. موراكي إن، نوماتا جي، إيباتا ك، ميزوغوتشي تي، شيبا تي، تامياكي إتش، وآخرون . (مايو 2010). “البنية البلورية للأشعة السينية لاختزال بروتوكلوروفيليد المستقل للضوء”. طبيعة . 465 (7294): 110– 4. بيب كود : 2010Natur.465..110M . دوى : 10.1038 / طبيعة08950 . بميد 20400946 . S2CID 4427639 .   
  43. ميسكوسكين ر، ناتر م، جوسلينجز د، كيسلر ف، أوب دين كامب ر، أبيل ك (أكتوبر 2001). " FLU: منظم سلبي لتخليق الكلوروفيل في نبات رشاد أذن الفأر" . وقائع الأكاديمية الوطنية للعلوم في الولايات المتحدة الأمريكية . 98 (22): 12826-31 . Bibcode : 2001PNAS...9812826M . doi : 10.1073 / pnas.221252798 . JSTOR 3056990. PMC 60138. PMID 11606728 .   
  44. "دورة الكلوروفيل" . الاتحاد الدولي للكيمياء الحيوية والبيولوجيا الجزيئية. 2011. تم الاطلاع عليه بتاريخ 4 يونيو 2020 .
  45. 1 2 هورتنستاينر، س. (2006). "تحلل الكلوروفيل أثناء الشيخوخة". المراجعة السنوية لبيولوجيا النبات . 57 (1): 55-77 . Bibcode : 2006AnRPB..57...55H . doi : 10.1146/annurev.arplant.57.032905.105212 . PMID 16669755 . 
  46. مولر تي، أولريش إم، أونجانيا كيه إتش، كراوتلر بي (2007). "مستقلبات الكلوروفيل رباعي البيرول عديمة اللون الموجودة في الفاكهة الناضجة هي مضادات أكسدة فعالة" . Angewandte Chemie . 46 (45): 8699–702 . Bibcode : 2007ACIE...46.8699M . doi : 10.1002/anie.200703587 . PMC 2912502. PMID 17943948 .  
  47. 1 2 "الكلوروفيل : خرائط عالمية" . Earthobservatory.nasa.gov . 25 أكتوبر 2018. تم الاطلاع عليه في 5 نوفمبر 2024 . 
  48. "الرابطة الدولية لمصنعي الألوان: الكلوروفيل" . iacmcolor.org . تم الاطلاع عليه بتاريخ 12 أبريل 2026 .
  49. آدامز ج (2004). الأفسنتين البشع : تاريخ الشيطان في الزجاجة . المملكة المتحدة: آي بي تاوريس، 2004. ص 22. ISBN   978-1860649202.
  50. ماندال، ب. ك.، ولينغ، ي. س. (10 مايو 2023). "تحليل الكلوروفيل/الكلوروفيلين في المنتجات الغذائية باستخدام طريقتي HPLC وHPLC-MS" . مجلة Molecules (بازل، سويسرا) . 28 (10): 4012. doi : 10.3390/molecules28104012 . ISSN 1420-3049 . PMC 10220893. PMID 37241753 .   
  51. أوهيغان، إل إيه (2022). "ليس كل ما يلمع ذهباً (أخضر): تأريخ موضة الكلوروفيل المعاصرة من خلال تحليل متعدد الوسائط للتسويق السويدي، 1950-1953" . مجلة البحوث التاريخية في التسويق . 14 (3): 374-398 . doi : 10.1108/jhrm-11-2021-0057 .