البلاستيدات الخضراء

بنية البلاستيدة الخضراء النموذجية في النباتات العليا. يتم احتواء الكلوروفيل الأخضر في حزم من الثايلاكويدات الشبيهة بالأقراص .
البلاستيدات الخضراء، التي تحتوي على أغشية ثايلاكويد، مرئية في خلايا نبات روسولابريوم كابيلار ، وهو نوع من الطحالب.

البلاستيدة الخضراء ( تُلفظ / ˈklɔːrəˌplæst , -plɑːst / ، KLOR - ə -plast, -plahst) [1][2] هي نوع من العضيات تُعرف باسم البلاستيدات ، وتُجري عملية التمثيل الضوئي في الغالب في الخلايا النباتية والطحلبية . تحتوي البلاستيدات الخضراء على تركيز عالٍ من أصباغ الكلوروفيل التي تمتص الطاقة من ضوء الشمس، وتحولها إلى طاقة كيميائية، وتحلل الماء لإطلاق الأكسجين. تُستخدم الطاقة الكيميائية الناتجة بعد ذلك لصنع السكر وجزيئات عضوية أخرى من ثاني أكسيد الكربون في دورة كالفن. تؤدي البلاستيدات الخضراء عددًا من الوظائف الأخرى ، بما في ذلك تخليق الأحماض الدهنية ، وتخليق الأحماض الأمينية ، والاستجابة المناعية في النباتات . يختلف عدد البلاستيدات الخضراء في الخلية الواحدة من واحدة، في بعض الطحالب وحيدة الخلية، إلى 100 في نباتات مثل نبات الرشاد والقمح .

تتميز البلاستيدات الخضراء بديناميكيتها العالية، فهي تدور وتتحرك داخل الخلايا. ويتأثر سلوكها بشدة بالعوامل البيئية، مثل لون الضوء وشدته. لا تستطيع الخلية النباتية إنتاج البلاستيدات الخضراء من جديد، بل يجب أن ترثها كل خلية ابنة أثناء انقسام الخلية، ويُعتقد أن هذه الصفة موروثة من سلفها، وهو بكتيريا زرقاء ضوئية قديمة ابتلعتها خلية حقيقية النواة بدائية . [ 3 ]

بسبب أصولها التكافلية الداخلية، تحتوي البلاستيدات الخضراء، مثل الميتوكوندريا ، على حمضها النووي الخاص المنفصل عن نواة الخلية . وباستثناء واحد ( الأميبا Paulinella chromatophora )، يمكن إرجاع جميع البلاستيدات الخضراء إلى حدث تكافلي داخلي واحد . ومع ذلك، يمكن العثور على البلاستيدات الخضراء في كائنات حية شديدة التنوع لا تربطها صلة قرابة مباشرة، وذلك نتيجة للعديد من الأحداث التكافلية الداخلية الثانوية وحتى الثالثية .

الاكتشاف وعلم أصول الكلمات

قدّم هوغو فون مول أول وصف نهائي للبلاستيدة الخضراء ( Chlorophyllkörnen ، أي "حبة الكلوروفيل") عام 1837، واصفًا إياها بأنها أجسام منفصلة داخل الخلية النباتية الخضراء. [ 4 ] وفي عام 1883، أطلق أندرياس فرانز فيلهلم شيمبر على هذه الأجسام اسم "الكلوروبلاستيدات" ( Chloroplastida ). [ 5 ] وفي عام 1884، اعتمد إدوارد ستراسبورغر مصطلح "البلاستيدات الخضراء" ( Chloroplasten ). [ 6 ] [ 7 ] [ 8 ]

كلمة "كلوروبلاست" مشتقة من الكلمتين اليونانيتين " كلوروس " (χλωρός)، والتي تعني أخضر، و "بلاستيس " (πλάστης)، والتي تعني "الذي يشكل". [ 9 ]

الأصل التكافلي الداخلي للبلاستيدات الخضراء

البلاستيدات الخضراء هي أحد أنواع العضيات العديدة في الخلايا حقيقية النواة التي تقوم بعملية التمثيل الضوئي. وقد تطورت من البكتيريا الزرقاء من خلال عملية تُسمى تكوين العضيات . [ 10 ] البكتيريا الزرقاء شعبة متنوعة من البكتيريا سالبة الغرام، قادرة على القيام بعملية التمثيل الضوئي الأكسجيني . ومثل البلاستيدات الخضراء، تحتوي على أغشية ثايلاكويد . [ 11 ] تحتوي أغشية الثايلاكويد على أصباغ التمثيل الضوئي ، بما في ذلك الكلوروفيل أ . [ 12 ] [ 13 ] اقترح عالم الأحياء الروسي كونستانتين ميريشكوفسكي هذا الأصل للبلاستيدات الخضراء لأول مرة عام 1905 [ 14 ] بعد أن لاحظ أندرياس فرانز فيلهلم شيمبر عام 1883 أن البلاستيدات الخضراء تشبه إلى حد كبير البكتيريا الزرقاء . [ 5 ] توجد البلاستيدات الخضراء فقط في النباتات والطحالب ، [ 15 ] وبعض أنواع الأميبية Paulinella . [ 16 ]

يُعتقد أن الميتوكوندريا قد نشأت من حدث تعايش داخلي مماثل ، حيث تم ابتلاع كائن بدائي النواة هوائي . [ 17 ]

التكافل الداخلي الأولي

التكافل الداخلي الأولي: ابتلعت خلية حقيقية النواة تحتوي على الميتوكوندريا بكتيريا زرقاء في حدث من التكافل الداخلي الأولي المتسلسل، مما أدى إلى إنشاء سلالة من الخلايا تحتوي على كلا العضيتين.
التكافل الداخلي الأولي: ابتلعت كائنات حقيقية النواة تحتوي على الميتوكوندريا بكتيريا زرقاء في حدث من التكافل الداخلي الأولي المتسلسل ، مما أدى إلى إنشاء سلالة من الخلايا تحتوي على كلا العضيتين. [ 17 ]

 قبل حوالي ملياري عام، [ 18 ] [ 19 ] [ 20 ] دخلت بكتيريا زرقاء حرة المعيشة خلية حقيقية النواة بدائية ، إما كغذاء أو كطفيلي داخلي ، [ 17 ] لكنها تمكنت من الإفلات من الفجوة البلعمية التي كانت محتجزة فيها والبقاء داخل الخلية. [ 12 ] تُسمى هذه الظاهرة بالتكافل الداخلي ، أو "خلية تعيش داخل خلية أخرى مع منفعة متبادلة لكليهما". تُعرف الخلية الخارجية عادةً باسم الخلية المضيفة ، بينما تُسمى الخلية الداخلية بالخلية المتكافلة . [ 17 ] قدمت البكتيريا الزرقاء المبتلعة ميزة للخلية المضيفة من خلال توفير السكر الناتج عن عملية التمثيل الضوئي. [ 17 ] بمرور الوقت، تم استيعاب البكتيريا الزرقاء، وفُقدت العديد من جيناتها أو نُقلت إلى نواة الخلية المضيفة. [ 21 ] ثم قامت الخلية المضيفة بتصنيع بعض بروتينات البكتيريا الزرقاء وإعادتها إلى البلاستيدة الخضراء (التي كانت تُعرف سابقًا بالبكتيريا الزرقاء)، مما سمح للمضيف بالتحكم في البلاستيدة الخضراء. [ 21 ] [ 22 ]

تُعرف البلاستيدات الخضراء التي يمكن تتبعها مباشرةً إلى سلف من البكتيريا الزرقاء (أي بدون حدث تكافل داخلي لاحق) باسم البلاستيدات الأولية (كلمة " بلاستيد " في هذا السياق تعني تقريبًا نفس معنى البلاستيدة الخضراء [ 17 ] ). [ 23 ] أما البلاستيدات الخضراء التي يمكن تتبعها إلى كائن حي حقيقي النواة آخر يقوم بعملية التمثيل الضوئي ويتعايش داخليًا فتُسمى البلاستيدات الثانوية أو البلاستيدات الثالثية (سيتم مناقشتها أدناه).

لطالما كان الجدل قائمًا حول ما إذا كانت البلاستيدات الخضراء الأولية قد نشأت من حدث تكافلي داخلي واحد أو من عمليات ابتلاع مستقلة متعددة عبر سلالات حقيقية النواة مختلفة. ويُعتقد الآن عمومًا أنه باستثناء واحد (الأميبا Paulinella chromatophora )، نشأت البلاستيدات الخضراء من حدث تكافلي داخلي واحد  قبل حوالي ملياري عام، وأن جميع هذه البلاستيدات تشترك في سلف واحد . [ 19 ] وقد اقتُرح أن أقرب الكائنات الحية صلةً بالبكتيريا الزرقاء السلفية المبتلعة هي Gloeomargarita lithophora . [ 24 ] [ 25 ] [ 26 ] وفي سياق منفصل، قبل حوالي 90-140  مليون عام، حدثت هذه العملية مرة أخرى في الأميبا Paulinella مع بكتيريا زرقاء من جنس Prochlorococcus . وغالبًا ما تُسمى هذه البلاستيدة الخضراء المتطورة بشكل مستقل بالكروماتوفور بدلًا من البلاستيدة الخضراء. [ 27 ] [ ملاحظة 1 ]

يُعتقد أن البلاستيدات الخضراء نشأت بعد الميتوكوندريا ، إذ تحتوي جميع حقيقيات النوى على الميتوكوندريا، ولكن ليس جميعها يحتوي على البلاستيدات الخضراء. [ 17 ] [ 28 ] يُطلق على هذه الظاهرة اسم التكافل الداخلي المتسلسل ، حيث ابتلع كائن حقيقي النواة مبكر سلفه الميتوكوندري ، ثم ابتلع أحفاده سلفه البلاستيدات الخضراء، مما أدى إلى تكوين خلية تحتوي على كل من البلاستيدات الخضراء والميتوكوندريا. [ 17 ]

التكافل الداخلي الثانوي والثالثي

يتكون التكافل الداخلي الثانوي من ابتلاع طحلب حقيقي النواة بواسطة كائن حقيقي النواة آخر، مما يؤدي إلى تكوين بلاستيدة خضراء بثلاثة أو أربعة أغشية.
يتكون التكافل الداخلي الثانوي من ابتلاع طحلب حقيقي النواة بواسطة كائن حقيقي النواة آخر، مما يؤدي إلى تكوين بلاستيدة خضراء بثلاثة أو أربعة أغشية.

حصلت العديد من الكائنات الحية الأخرى على البلاستيدات الخضراء من سلالات البلاستيدات الخضراء الأولية من خلال التكافل الداخلي الثانوي - أي ابتلاع طحلب أحمر أو أخضر يحتوي على بلاستيدة خضراء أولية. تُعرف هذه البلاستيدات الخضراء باسم البلاستيدات الثانوية . [ 23 ]

نتيجةً لحدث التكافل الداخلي الثانوي، تحتوي البلاستيدات الخضراء الثانوية على أغشية إضافية إلى جانب الغشاءين الأصليين في البلاستيدات الخضراء الأولية. [ 29 ] في البلاستيدات الثانوية، عادةً ما تبقى البلاستيدة الخضراء فقط، وأحيانًا غشاء الخلية والنواة ، لتشكل بلاستيدة خضراء بثلاثة أو أربعة أغشية [ 30 ] - غشاءا البكتيريا الزرقاء، وأحيانًا غشاء خلية الطحلب المأكول، والفجوة البلعمية من غشاء خلية المضيف. [ 29 ]

The genes in the phagocytosed eukaryotes nucleus are often transferred to the secondary host's nucleus.[29]Cryptomonas and chlorarachniophytes retain the phagocytosed eukaryotes nucleus, an object called a nucleomorph,[29] located between the second and third membranes of the chloroplast.[12][22]

All secondary chloroplasts come from green and red algae. No secondary chloroplasts from glaucophytes have been observed, probably because glaucophytes are relatively rare in nature, making them less likely to have been taken up by another eukaryote.[29]

Still other organisms, including the dinoflagellates Karlodinium and Karenia, obtained chloroplasts by engulfing an organism with a secondary plastid. These are called tertiary plastids.[23]

مخطط تطور البلاستيدات الخضراء
Possible cladogram of chloroplast evolution[29][31][32] Circles represent endosymbiotic events. For clarity, dinophyte tertiary endosymbioses and many nonphotosynthetic lineages have been omitted.
a It is now established that Chromalveolata is paraphyletic to Rhizaria.[32]

Primary chloroplast lineages

All primary chloroplasts belong to one of four chloroplast lineages—the glaucophyte chloroplast lineage, the rhodophyte ("red") chloroplast lineage, the chloroplastida ("green") chloroplast lineage, and the amoeboid Paulinella chromatophora lineage.[33] The glaucophyte, rhodophyte, and chloroplastidian lineages are all descended from the same ancestral endosymbiotic event and are all within the group Archaeplastida.[29]

Glaucophyte chloroplasts

نبات الطحالب الزرقاء Cyanophora paradoxa مع بلاستيدتين خضراوين في طور الانقسام.
The glaucophyte Cyanophora paradoxa with two chloroplasts in the process of dividing.

تُعدّ مجموعة البلاستيدات الخضراء في الطحالب الزرقاء أصغر السلالات الثلاث الرئيسية للبلاستيدات الخضراء، إذ لا يوجد سوى 25 نوعًا موصوفًا منها. [ 34 ] وقد تفرّعت الطحالب الزرقاء أولًا قبل تفرّع سلالات البلاستيدات الخضراء الحمراء والخضراء. [ 35 ] ولهذا السبب، تُعتبر أحيانًا وسيطة بين البكتيريا الزرقاء والبلاستيدات الخضراء الحمراء والخضراء. [ 36 ] ويدعم هذا التفرّع المبكر كلٌّ من الدراسات الوراثية والخصائص الفيزيائية الموجودة في بلاستيدات الطحالب الزرقاء والبكتيريا الزرقاء، والتي لا توجد في البلاستيدات الخضراء الحمراء والخضراء. أولًا، تحتوي بلاستيدات الطحالب الزرقاء على جدار ببتيدوغليكان ، وهو نوع من جدران الخلايا لا يوجد إلا في البكتيريا (بما في ذلك البكتيريا الزرقاء). [ ملاحظة ٢ ] ثانيًا، تحتوي بلاستيدات الطحالب الزرقاء على أغشية ثايلاكويد متحدة المركز غير متراصة تحيط بالكاربوكسيسوم - وهو بنية عشرينية الوجوه تحتوي على إنزيم روبيسكو المسؤول عن تثبيت الكربون . ثالثًا، يُجمع النشا المُنتَج بواسطة البلاستيدة خارجها. [ ٣٧ ] بالإضافة إلى ذلك، ومثل البكتيريا الزرقاء، فإن أغشية ثايلاكويد كل من الطحالب الزرقاء والطحالب الحمراء مُرصّعة بتراكيب تجمع الضوء تُسمى الفيكوبيلوسومات .

الطحالب الحمراء (البلاستيدات الخضراء الحمراء)

تُعدّ الطحالب الحمراء ، أو الرودوفيت ، مجموعةً كبيرةً ومتنوعةً. [ 29 ] تُسمى بلاستيدات الرودوفيت أيضًا بالرودوبلاستات ، [ 23 ] أي "البلاستيدات الحمراء". [ 38 ] تتميز الرودوبلاستات بغشاء مزدوج مع مسافة بين الغشائين، وبوجود أصباغ الفيكوبيلين مُنظمة في جسيمات فيكوبيلوزومية على أغشية الثايلاكويد، مما يمنع تكدسها. [ 12 ] يحتوي بعضها على البيرينويدات . [ 23 ] تحتوي الرودوبلاستات على الكلوروفيل أ والفيكوبيلينات [ 32 ] كأصباغٍ لعملية التمثيل الضوئي؛ ويُعدّ الفيكوبيلين فيكوإريثرين مسؤولًا عن إعطاء العديد من الطحالب الحمراء لونها الأحمر المميز . [ 39 ] ومع ذلك، نظرًا لاحتوائها أيضًا على الكلوروفيل أ الأزرق المخضر وأصباغ أخرى، فإن العديد منها يميل لونه إلى الأحمر أو الأرجواني نتيجةً لهذا المزيج. [ 23 ] يُعدّ صبغ الفيكوإريثرين الأحمر تكيفًا يُساعد الطحالب الحمراء على امتصاص المزيد من ضوء الشمس في المياه العميقة [ 23 ] ، ولذلك، تحتوي بعض الطحالب الحمراء التي تعيش في المياه الضحلة على كمية أقل من الفيكوإريثرين في رودوبلاستها، وقد تبدو أكثر خضرة. [ 39 ] تُصنّع الرودوبلاستات نوعًا من النشا يُسمى نشا فلوريدين ، [ 23 ] والذي يتجمع على شكل حبيبات خارج الرودوبلاست، في سيتوبلازم الطحلب الأحمر. [ 12 ]

الكلوروبلاستيدا (البلاستيدات الخضراء)

تُعد مجموعة الكلوروبلاستيدا سلالة كبيرة ومتنوعة للغاية تشمل كلاً من الطحالب الخضراء والنباتات البرية . [ 40 ] تُسمى هذه المجموعة أيضًا Viridiplantae ، والتي تضم فرعين أساسيين هما Chlorophyta و Streptophyta .

معظم البلاستيدات الخضراء خضراء اللون، إلا أن بعضها ليس كذلك بسبب أصباغ إضافية تُخفي اللون الأخضر الناتج عن الكلوروفيل، كما هو الحال في الخلايا الساكنة لـ Haematococcus pluvialis . تختلف البلاستيدات الخضراء عن بلاستيدات الطحالب الزرقاء والحمراء في أنها فقدت الفيكوبيلوزومات ، وتحتوي على الكلوروفيل ب . [ 12 ] كما فقدت جدار الببتيدوغليكان بين غشائها المزدوج، تاركةً فراغًا بين الغشائين. [ 12 ] احتفظت بعض النباتات ببعض الجينات اللازمة لتخليق الببتيدوغليكان، لكنها أعادت توظيفها في انقسام البلاستيدات الخضراء . [ 41 ] تحتفظ سلالات الكلوروبلاستيدا أيضًا بالنشا داخل بلاستيداتها الخضراء. [ 12 ] [ 32 ] [ 40 ] في النباتات وبعض الطحالب، تُرتّب أغشية الثايلاكويد في البلاستيدات الخضراء في حزم من الجرانا. تحتوي بعض البلاستيدات الخضراء في الطحالب الخضراء، وكذلك تلك الموجودة في نباتات القرن ، على بنية تسمى البيرينويد ، [ 12 ] والتي تعمل على تركيز إنزيم روبيسكو وثاني أكسيد الكربون في البلاستيدة الخضراء، وهي تشبه وظيفيًا الكاربوكسيسوم في الطحالب الزرقاء . [ 42 ] [ 43 ]

توجد بعض سلالات الطحالب الخضراء الطفيلية غير ذاتية التغذية الضوئية التي فقدت بلاستيداتها الخضراء تمامًا، مثل بروتوثيكا [ 32 أو التي لا تحتوي على بلاستيدات خضراء مع احتفاظها بجينوم البلاستيدات الخضراء المنفصل، كما هو الحال في هيليكوسبوريديوم [ 44 ] . وتؤكد أوجه التشابه المورفولوجية والفسيولوجية، فضلًا عن علم الوراثة العرقي ، أن هذه السلالات كانت تمتلك بلاستيدات خضراء في الأصل ، لكنها فقدتها منذ ذلك الحين [ 44 ] [ 45 ] .

بولينيلا كروماتوفورا

صورة مجهرية ضوئية للأميبية Paulinella chromatophora
صورة مجهرية ضوئية للأميبية Paulinella chromatophora

تمتلك الأميبات الضوئية من جنس باولينيلا - باولينيلا كروماتوفورا، وباولينيلا ميكروبورا، وباولينيلا لونجيكروماتوفورا البحرية - البلاستيدة الخضراء الوحيدة المعروفة التي تطورت بشكل مستقل، والتي تُسمى غالبًا بالكروماتوفور . [ ملاحظة 1 ] بينما تنشأ جميع البلاستيدات الخضراء الأخرى من حدث تكافلي داخلي قديم واحد، اكتسبت باولينيلا بشكل مستقل بكتيريا زرقاء تكافلية داخلية من جنس سينيكوكوس منذ حوالي 90 إلى 140 مليون سنة. [ 27 ] [ 29 ] تحتوي كل خلية من خلايا باولينيلا على بلاستيدة خضراء واحدة أو اثنتين على شكل نقانق؛ [ 21 ] [ 46 ] وقد وصفها لأول مرة عالم الأحياء الألماني روبرت لاوتربورن عام 1894. [ 47 ]

يُعدّ الكروماتوفور مُختزلاً للغاية مقارنةً بأقاربه من البكتيريا الزرقاء الحرة المعيشة، وله وظائف محدودة. فعلى سبيل المثال، يبلغ حجم جينومه حوالي مليون زوج قاعدي ، أي ثلث حجم جينومات سينيكوكوس ، ولا يُشفّر سوى حوالي 850 بروتينًا. [ 21 ] ومع ذلك، يظل هذا الحجم أكبر بكثير من جينومات البلاستيدات الخضراء الأخرى، التي يبلغ حجمها عادةً حوالي 150,000 زوج قاعدي. كما أن الكروماتوفورات تنقل كمية أقل بكثير من حمضها النووي إلى نواة عوائلها. إذ يُشكّل الحمض النووي النووي في باولينيلا حوالي 0.3-0.8% من الحمض النووي، مقارنةً بنسبة 11-14% من البلاستيدات الخضراء في النباتات. [ 46 ] وكما هو الحال في البلاستيدات الخضراء الأخرى، تُزوّد ​​باولينيلا الكروماتوفور ببروتينات مُحددة باستخدام تسلسل استهداف مُحدد. [ 48 ] ​​نظرًا لأن الخلايا الصبغية أصغر بكثير مقارنة بالبلاستيدات الخضراء التقليدية، تتم دراسة طحلب Paulinella chromatophora لفهم كيفية تطور البلاستيدات الخضراء المبكرة. [ 21 ]

السلالات الثانوية والثالثية للبلاستيدات الخضراء

البلاستيدات الخضراء المشتقة من الطحالب الخضراء

استوعبت العديد من المجموعات الطحالب الخضراء في ثلاث أو أربع مراحل منفصلة. [ 49 ] توجد البلاستيدات الخضراء الثانوية المشتقة من الطحالب الخضراء بشكل أساسي في اليوجلينات والكلوراراكنيوفيتات . كما توجد أيضًا في سلالة واحدة من الدياتومات [ 32 ] ، وربما في سلف سلالة CASH ( الكريبتومونادات ، والألفيولات ، والسترامينوبيلات ، والهابتوفيتات ) [ 50 ]. تحتوي العديد من البلاستيدات الخضراء المشتقة من الطحالب الخضراء على البيرينويدات ، ولكن على عكس البلاستيدات الخضراء في أسلافها من الطحالب الخضراء، يتجمع ناتج التخزين في حبيبات خارج البلاستيدة الخضراء. [ 12 ]

اليوجلينوفايت

تحتوي اليوجلينا ، وهي من اليوجلينافيت ، على بلاستيدات خضراء ثانوية من الطحالب الخضراء.

اليوجلينات هي مجموعة من الطلائعيات السوطية الشائعة التي تحتوي على بلاستيدات خضراء مشتقة من طحلب أخضر. [ 29 ] اليوجلينات هي المجموعة الوحيدة خارج مجموعة Diaphoretices التي تمتلك بلاستيدات خضراء دون أن تقوم بعملية سرقة البلاستيدات . [ 51 ] [ 52 ] تحتوي بلاستيدات اليوجلينات على ثلاثة أغشية. يُعتقد أن غشاء المضيف المتعايش الداخلي الأساسي قد فُقد (مثل غشاء الطحلب الأخضر)، تاركًا غشائين من البكتيريا الزرقاء وغشاء البلعمة للمضيف الثانوي. [29] تحتوي بلاستيدات اليوجلينات على بيرينويد وثايلاكويدات مُرتبة في مجموعات ثلاثية . يُخزن الكربون المُثبت من خلال عملية التمثيل الضوئي على شكل باراميلون ، الموجود في حبيبات مُحاطة بغشاء في سيتوبلازم اليوجلينات. [ 12 ] [ 32 ]

الكلوراراكنيوفيت

الكلوراراكنيون ريبتانس هو نوع من الكلوراراكنيوفايت. استبدلت الكلوراراكنيوفايت طحلبها الأحمر الأصليبطحلب أخضر .

الكلوراراكنيوفيتات مجموعة نادرة من الكائنات الحية التي تحتوي أيضًا على بلاستيدات خضراء مشتقة من الطحالب الخضراء، [ 29 ] على الرغم من أن تاريخها أكثر تعقيدًا من تاريخ اليوجلينات. يُعتقد أن سلف الكلوراراكنيوفيتات كان كائنًا حقيقي النواة يحتوي على بلاستيدة خضراء مشتقة من الطحالب الحمراء. ويُعتقد أنه فقد بلاستيدته الخضراء الأولى من الطحالب الحمراء، ثم ابتلع لاحقًا طحلبًا أخضر، مما منحه بلاستيدته الخضراء الثانية المشتقة من الطحالب الخضراء. [ 32 ]

تُحاط بلاستيدات الكلوراراكنيوفيت بأربعة أغشية، باستثناء المنطقة القريبة من غشاء الخلية، حيث تندمج أغشية البلاستيدات لتُشكّل غشاءً مزدوجًا. [ 12 ] وتترتب أغشية الثايلاكويد الخاصة بها في مجموعات ثلاثية غير متماسكة. [ 12 ] تحتوي الكلوراراكنيوفيت على نوع من عديد السكاريد يُسمى كريسولامينارين ، والذي تخزنه في السيتوبلازم، [ 32 ] وغالبًا ما يتجمع حول البيرينويد البلاستيدي ، الذي يبرز داخل السيتوبلازم. [ 12 ]

تتميز بلاستيدات الكلوراراكنيوفيت بأن الطحلب الأخضر الذي اشتُقت منه لم يتحلل تمامًا - إذ لا تزال نواته موجودة على شكل نيوكليومورف [ 29 ] موجود بين غشائي البلاستيدة الثانية والثالثة [ 12 ] - في الحيز المحيط بالبلازما ، والذي يتوافق مع سيتوبلازم الطحلب الأخضر. [ 32 ]

البلاستيدات الخضراء المشتقة من نباتات البراسينوفيت

اللون الأخضر لنبات Lepidium chlorophytum ناتج عن بلاستيدة مشتقة من Pedinophyceae .

فقدت الدياتومات من جنس ليبيدودينيوم بلاستيداتها الخضراء الأصلية المحتوية على البيريدينين، واستبدلتها ببلاستيدة خضراء مشتقة من الطحالب الخضراء (وتحديدًا، من نوع براسينوفايت ). [ 12 ] [ 53 ] ليبيدودينيوم هي الدياتومات الوحيدة التي تمتلك بلاستيدة خضراء لا تنتمي إلى سلالة رودوبلاست . تُحاط البلاستيدة الخضراء بغشائين، ولا تحتوي على نواة، إذ نُقلت جميع جينات النواة إلى نواة الدياتوم . [ 53 ] كان حدث التكافل الداخلي الذي أدى إلى ظهور هذه البلاستيدة الخضراء عبارة عن تكافل داخلي ثانوي متسلسل، وليس تكافلًا داخليًا ثلاثيًا، حيث كان المتعايش الداخلي طحلبًا أخضر يحتوي على بلاستيدة خضراء أولية (مما أدى إلى تكوين بلاستيدة خضراء ثانوية). [ 32 ]

التكافل الثلاثي

Pseudoblepharisma tenue مع اثنين من الكائنات التكافلية الضوئية.

يحتوي الهدبي Pseudoblepharisma tenue على نوعين من البكتيريا التكافلية، أحدهما وردي والآخر أخضر. في عام 2021، تم تأكيد أن كلا النوعين من البكتيريا التكافلية يقومان بعملية التمثيل الضوئي: Ca. Thiodictyon intracellulare ( من عائلة Chromatiaceae )، وهي بكتيريا كبريتية أرجوانية يبلغ حجم جينومها نصف حجم جينوم أقرب أقربائها المعروفة؛ و Chlorella sp. K10، وهي طحلب أخضر. [ 54 ] يوجد أيضًا نوع فرعي من Pseudoblepharisma tenue يحتوي فقط على بلاستيدات خضراء من الطحالب الخضراء ولا يحتوي على بكتيريا أرجوانية تكافلية داخلية. [ 55 ]

البلاستيدات الخضراء المشتقة من الطحالب الحمراء

يبدو أن البلاستيدات الخضراء الثانوية المشتقة من الطحالب الحمراء قد تم استيعابها مرة واحدة فقط، ثم تنوعت إلى مجموعة كبيرة تُسمى الكروميستات أو الكرومالفولاتات. وتوجد اليوم في الهابتوفيتات ، والكريبتومونادات ، والهيتروكونتات ، والدينوفلاجيلات ، والأبيكومبلكسانات (سلالة CASH). [ 32 ] تحتوي البلاستيدات الخضراء الثانوية في الطحالب الحمراء عادةً على الكلوروفيل ج، وهي محاطة بأربعة أغشية. [ 12 ]

مع ذلك، رُفضت فرضية أحادية الأصل للكروميست ، ويُرجّح أن بعض الكروميستات اكتسبت بلاستيداتها عن طريق دمج كروميست آخر بدلاً من وراثتها من سلف مشترك. ويبدو أن الكريبتوفيتات قد اكتسبت بلاستيداتها من الطحالب الحمراء، والتي انتقلت منها إلى كل من الهيتروكونتوفيتات والهابتوفيتات ، ثم من الأخيرة إلى الميزوزوا . [ 56 ]

النباتات الكريبتوفيتية

الكريبتوفيتات تحت المجهر الإلكتروني الماسح .

الكريبتوفيتات ، أو الكريبتومونادات، هي مجموعة من الطحالب تحتوي على بلاستيدة خضراء مشتقة من الطحالب الحمراء. تحتوي بلاستيدة الكريبتوفيتات على نواة تشبه ظاهريًا تلك الموجودة في الكلوراراكنيوفيتات . [ 29 ] تتكون بلاستيدة الكريبتوفيتات من أربعة أغشية. الغشاء الخارجي متصل بالشبكة الإندوبلازمية الخشنة . تقوم هذه البلاستيدة بتخليق النشا العادي ، الذي يُخزن في حبيبات موجودة في الحيز المحيط بالبلاستيدة - خارج الغشاء المزدوج الأصلي، في المكان الذي يُقابل سيتوبلازم الطحالب الحمراء السلفية. يوجد داخل بلاستيدة الكريبتوفيتات بيرينويد وثايلاكويدات في مجموعات ثنائية. [ 12 ] لا تحتوي بلاستيدات الكريبتوفيت على جسيمات فيكوبيلوزومية ، [ 12 ] ولكنها تحتوي على أصباغ فيكوبيلين تحتفظ بها في حيز الثايلاكويد، بدلاً من تثبيتها على السطح الخارجي لأغشية الثايلاكويد. [ 12 ] [ 29 ]

ربما لعبت الكريبتوفيتات دورًا رئيسيًا في انتشار البلاستيدات الخضراء القائمة على الطحالب الحمراء. [ 57 ] [ 58 ]

الهابتوفايت

صورة مجهرية إلكترونية ماسحة لـ Gephyrocapsa oceanica ، وهو نوع من الهابتوفيت.

تُشبه الهابتوفيتات الكريبتوفيتات أو الهيتروكونتوفيتات وترتبط بها ارتباطًا وثيقًا. [ 32 ] تفتقر بلاستيداتها الخضراء إلى النواة، [ 12 ] [ 29 ] وتتكون أغشية الثايلاكويدات فيها من ثلاث طبقات، وتُصنّع سكر الكريزولامينارين ، الذي يُخزّن في حبيبات خارج البلاستيدة الخضراء تمامًا، في سيتوبلازم الهابتوفيت. [ 12 ]

Stramenopiles (نباتات متغايرة)

إن الأصباغ الضوئية الموجودة في البلاستيدات الخضراء تجعل الدياتومات ذات لون بني مخضر.

إن السترامينوبيلات ، والمعروفة أيضًا باسم النباتات غير المتجانسة، هي مجموعة كبيرة جدًا ومتنوعة من حقيقيات النوى. وهي تشمل Ochrophyta - والتي تشمل الدياتومات والطحالب البنية (الأعشاب البحرية) والطحالب الذهبية (الكريسوفيت) [ 39 ] - و Xanthophyceae (وتسمى أيضًا الطحالب الخضراء الصفراء). [ 32 ]

تتشابه بلاستيدات الهيتروكونت إلى حد كبير مع بلاستيدات الهابتوفايت. فهي تحتوي على بيرينويد ، وثلاثة أغشية ثايلاكويد، وغلاف بلاستيدي رباعي الطبقات (باستثناءات قليلة) [ 12 ] ، حيث يتصل الغشاء الخارجي بالشبكة الإندوبلازمية . ومثل الهابتوفايت، تخزن السترامينوبيلات السكر في حبيبات الكريزولامينارين في السيتوبلازم. [ 12 ] تحتوي بلاستيدات السترامينوبيلات على الكلوروفيل أ ، والكلوروفيل ج (باستثناءات قليلة ) [ 12 ] . [ 29 ] كما تحتوي على الكاروتينات التي تمنحها ألوانها المتعددة. [ 39 ]

الأبيكومبلكسان، والكرومريدات، والدينوفيتات

تُعدّ الحويصلات مجموعة رئيسية من حقيقيات النوى وحيدة الخلية، تضمّ أفرادًا ذاتية التغذية وأخرى غيرية التغذية . يحتوي العديد منها على بلاستيدة مشتقة من الطحالب الحمراء. ومن أبرز خصائص هذه المجموعة المتنوعة فقدانها المتكرر لعملية التمثيل الضوئي. مع ذلك، تستمر غالبية هذه الكائنات غيرية التغذية في معالجة بلاستيدة غير قادرة على التمثيل الضوئي. [ 59 ]

الأبيكومبلكسان
رسم تخطيطي للبلازموديوم، بما في ذلك البلاستيدة القمية.

الأبيكومبلكسان هي مجموعة من الألفيولاتا. ومثل الهيليكوسبرويديا ، فهي طفيلية، ولها بلاستيدة خضراء غير قادرة على التمثيل الضوئي. [ 32 ] كان يُعتقد سابقًا أنها مرتبطة بالهيليكوسبرويديا، ولكن من المعروف الآن أن الهيليكوسبرويديا هي طحالب خضراء وليست جزءًا من سلالة CASH. [ 32 ] تشمل الأبيكومبلكسان بلازموديوم ، طفيل الملاريا . تحتفظ العديد من الأبيكومبلكسان ببلاستيدة خضراء أثرية مشتقة من الطحالب الحمراء [ 60 ] [ 32 ] تُسمى الأبيكوپلاست ، والتي ورثتها من أسلافها. فقدت الأبيكوپلاستات جميع وظائف التمثيل الضوئي، ولا تحتوي على أصباغ التمثيل الضوئي أو أغشية ثايلاكويد حقيقية. وهي محاطة بأربعة أغشية، لكن هذه الأغشية غير متصلة بالشبكة الإندوبلازمية . [ 12 ] فقدت أنواع أخرى من الأبيكومبلكسان، مثل الكريبتوسبوريديوم، البلاستيدات الخضراء تمامًا. [ 60 ] تخزن الأبيكومبلكسان طاقتها في حبيبات الأميلوبكتين الموجودة في سيتوبلازمها، على الرغم من أنها غير قادرة على القيام بعملية التمثيل الضوئي. [ 12 ]

إن احتفاظ الأبيكومبلكسان بالبلاستيدات الخضراء غير المسؤولة عن عملية التمثيل الضوئي يُظهر كيف تؤدي هذه البلاستيدات وظائف مهمة أخرى غير التمثيل الضوئي . تُزوّد ​​البلاستيدات الخضراء في النباتات خلاياها بالعديد من العناصر المهمة إلى جانب السكر، والبلاستيدات القمية ليست استثناءً، فهي تُصنّع الأحماض الدهنية ، وبيروفوسفات الأيزوبنتينيل ، وتجمعات الحديد والكبريت ، وتُنفّذ جزءًا من مسار الهيم . [ 60 ] وتُعدّ وظيفة بيروفوسفات الأيزوبنتينيل أهم وظائف البلاستيدات القمية، بل إن الأبيكومبلكسان تموت عندما يُعيق أي شيء هذه الوظيفة، وعندما تُزرع الأبيكومبلكسان في وسط غني ببيروفوسفات الأيزوبنتينيل، فإنها تتخلص من هذه العضية. [ 60 ]

الكروميريدات
المراحل النموذجية لدورة حياة Vitrella brassicaformis ، وهي من عائلة الكروميريد.

الكروميريدات هي مجموعة من الطحالب المعروفة في الشعاب المرجانية الأسترالية، وتضم بعض الأقارب الضوئية القريبة من الأبيكومبلكسان. تم اكتشاف أول عضو فيها، وهو كروميرا فيليا ، وعزله لأول مرة عام 2001. ويمثل اكتشاف كروميرا فيليا، ببنيتها المشابهة للأبيكومبلكسان، حلقة وصل مهمة في التاريخ التطوري للأبيكومبلكسان والدينوفيتات. تحتوي بلاستيداتها على أربعة أغشية، وتفتقر إلى الكلوروفيل ج، وتستخدم الشكل الثاني من إنزيم روبيسكو الناتج عن عملية نقل أفقي. [ 61 ]

الدينافيت
Ceratium furca ، وهو دينوفايت يحتوي على البيريدينين . [ 62 ]

تُعدّ الدياتومات مجموعةً أخرى كبيرة ومتنوعة للغاية، نصفها تقريبًا يقوم بعملية التمثيل الضوئي جزئيًا على الأقل (أي مختلط التغذية ). [ 39 ] [ 53 ] تتميز بلاستيدات الدياتومات بتاريخ معقد نسبيًا. معظم بلاستيدات الدياتومات هي بلاستيدات ثانوية مشتقة من الطحالب الحمراء . فقدت العديد من الدياتومات البلاستيدة الخضراء (أصبحت غير قادرة على التمثيل الضوئي)، واستبدلها بعضها من خلال التكافل الداخلي الثلاثي . [ 63 ] واستبدلت أنواع أخرى بلاستيدتها الأصلية ببلاستيدة مشتقة من الطحالب الخضراء . [ 29 ] [ 32 ] [ 53 ] يُعتقد أن بلاستيدة البيريدينين هي البلاستيدة "الأصلية" للدينوفلاجيلات، [ 53 ] والتي فُقدت أو تقلص حجمها أو استُبدلت، أو توجد في العديد من سلالات الدياتومات الأخرى. [ 32 ]

أكثر أنواع البلاستيدات الخضراء شيوعًا في الدياتومات هي بلاستيدات البيريدينين، والتي تتميز بوجود صبغة البيريدينين الكاروتينويدية في بلاستيداتها، بالإضافة إلى الكلوروفيل أ والكلوروفيل ج 2 . [ 29 ] [ 53 ] لا يوجد البيريدينين في أي مجموعة أخرى من البلاستيدات الخضراء. [ 53 ] تُحاط بلاستيدة البيريدينين بثلاثة أغشية (وأحيانًا اثنين)، [ 12 ] بعد أن فقدت غشاء الخلية الأصلي للطحالب الحمراء المتكافلة. [ 29 ] [ 32 ] الغشاء الخارجي غير متصل بالشبكة الإندوبلازمية. [ 12 ] [ 53 ] تحتوي هذه البلاستيدات على البيرينويد ، ولها أغشية ثايلاكويد ثلاثية الطبقات. يوجد النشا خارج البلاستيدة الخضراء. [ 12 ] تحتوي البلاستيدات الخضراء المحتوية على البيريدينين أيضًا على حمض نووي مُختزل للغاية ومُجزأ إلى العديد من الحلقات الصغيرة. [ 53 ] هاجر معظم الجينوم إلى النواة، ولم يتبق في البلاستيدة الخضراء سوى الجينات الأساسية المتعلقة بعملية التمثيل الضوئي.

تحتوي معظم بلاستيدات الدياتومات على إنزيم روبيسكو من النوع الثاني، وعلى الأقل أصباغ التمثيل الضوئي: الكلوروفيل أ ، والكلوروفيل ج 2 ، وبيتا كاروتين ، وصبغة زانثوفيل واحدة على الأقل خاصة بالدياتومات ( بيريدينين ، أو دينوكسانثين ، أو ديادينوكسانثين )، مما يمنح العديد منها لونًا بنيًا ذهبيًا. [ 59 ] [ 53 ] تخزن جميع الدياتومات النشا في سيتوبلازمها، ومعظمها يحتوي على بلاستيدات ذات أغشية ثايلاكويد مرتبة في مجموعات ثلاثية. [ 12 ]

البلاستيدات الخضراء المشتقة من الهابتوفايت

كارينيا بريفيس هي دينوفايت تحتوي على فوكوكسانثين وهي مسؤولة عن ازدهار الطحالب الذي يسمى " المد الأحمر ". [ 53 ]

فقدت سلالات الدياتومات الفوكوكسانثينية (بما في ذلك كارلودينيوم وكارينيا ) [ 32 ] بلاستيداتها الخضراء الأصلية المشتقة من الطحالب الحمراء، واستبدلتها ببلاستيدة خضراء جديدة مشتقة من هابتوفيت متكافل داخلي ، مما أدى إلى تكوين بلاستيدات ثلاثية. من المحتمل أن كارلودينيوم وكارينيا قد استوعبتا متكافلات داخلية مختلفة. [ 32 ] نظرًا لأن بلاستيدة الهابتوفيت الخضراء تحتوي على أربعة أغشية، فمن المتوقع أن يؤدي التكافل الداخلي الثلاثي إلى تكوين بلاستيدة خضراء بستة أغشية، بإضافة غشاء خلية الهابتوفيت والفجوة البلعمية للدينوفايت . [ 64 ] ومع ذلك، فقد اختُزل الهابتوفيت بشكل كبير، حيث جُرِّد من بعض الأغشية ونواته، ولم يتبقَّ منه سوى بلاستيدته الخضراء (بغشائها المزدوج الأصلي)، وربما غشاء أو غشاءين إضافيين حولها. [ 32 ] [ 64 ]

تتميز البلاستيدات الخضراء المحتوية على الفوكوكسانثين بوجود صبغة الفوكوكسانثين (في الواقع 19′-هكسانويلوكسي-فوكوكسانثين و/أو 19′-بيوتانويلوكسي-فوكوكسانثين ) وعدم وجود البيريدينين. كما يوجد الفوكوكسانثين في بلاستيدات الهابتوفايت، مما يقدم دليلاً على أصلها. [ 53 ]

البلاستيدات الخضراء المشتقة من الدياتومات

يُعد جنس Durinskia ذا أهمية كبيرة لدراسة أحداث التكافل الداخلي وتكامل العضيات. [ 65 ]

تحتوي بعض الطحالب الدوارة، مثل كريبتوبيريدينيوم ودورينسكيا ، [ 32 ] على بلاستيدة خضراء مشتقة من الدياتوم ( الطحالب المتغايرة ). [ 29 ] تُحاط هذه البلاستيدات الخضراء بما يصل إلى خمسة أغشية، [ 29 ] (بحسب ما إذا كان يُحتسب الدياتوم المتعايش بالكامل كبلاستيدة خضراء، أو فقط البلاستيدة الخضراء المشتقة من الطحالب الحمراء الموجودة بداخله). وقد اختُزل الدياتوم المتعايش بشكل طفيف نسبيًا - فهو لا يزال يحتفظ بميتوكوندرياه الأصلية ، [ 32 ] ويحتوي على شبكة إندوبلازمية ، وريبوسومات ، ونواة ، وبالطبع، بلاستيدات خضراء مشتقة من الطحالب الحمراء - أي خلية كاملة تقريبًا ، [ 66 ] وكل ذلك داخل تجويف الشبكة الإندوبلازمية للعائل . [ 32 ] مع ذلك، لا يستطيع المتعايش الداخلي للدياتوم تخزين غذائه بنفسه، إذ يوجد عديد السكاريد التخزيني الخاص به في حبيبات داخل سيتوبلازم العائل من الدياتومات. [ 12 ] [ 66 ] توجد نواة المتعايش الداخلي للدياتوم، ولكن من غير المرجح أن تُسمى نواة مُتَشَكِّلة لأنها لا تُظهر أي علامة على انكماش الجينوم ، بل ربما تكون قد تضخمت . [ 32 ] وقد ابتلعت الدياتومات من قِبَل الدياتومات السوطية ثلاث مرات على الأقل. [ 32 ]

يُحاط الكائن المتعايش الداخلي للدياتوم بغشاء واحد، [ 53 ] ويحتوي داخله على بلاستيدات خضراء ذات أربعة أغشية. ومثل سلف الدياتوم المتعايش الداخلي، تحتوي البلاستيدات الخضراء على أغشية ثايلاكويد وبيرينويد ثلاثية . [ 66 ]

في بعض هذه الأجناس ، لا تُعدّ البلاستيدات الخضراء الموجودة في الدياتوم المتعايش داخليًا هي البلاستيدات الخضراء الوحيدة في الدينافيت. لا تزال البلاستيدة الخضراء الأصلية ثلاثية الأغشية من البيريدينين موجودة، وقد تحولت إلى بقعة عينية . [ 29 ] [ 32 ]

عملية تجميل الأسنان

في بعض مجموعات الطلائعيات المختلطة التغذية ، مثل بعض السوطيات الدوارة (مثل دينوفيسيس )، تُفصل البلاستيدات الخضراء من طحلب تم أسره وتُستخدم مؤقتًا. قد لا يتجاوز عمر هذه البلاستيدات الخضراء المسروقة بضعة أيام، ثم تُستبدل. [ 67 ] [ 68 ]

بلاستيدة خضراء مشتقة من نبات دينوفايت من نبات كريبتوفيت

يحتوي نبات Dinophysis acuminata على بلاستيدات خضراء مأخوذة من نبات كريبتوفيت . [ 29 ]

تحتوي أنواع جنس دينوفيسيس على بلاستيدة خضراء تحتوي على الفيكوبيلين [ 64 ] مأخوذة من طحلب كريبتوفايت . [ 29 ] ومع ذلك، فإن طحلب الكريبتوفايت ليس متعايشًا داخليًا، إذ يبدو أن البلاستيدة الخضراء فقط هي التي أُخذت، وقد جُرِّدت من نواتها وغشائيها الخارجيين، تاركةً بلاستيدة خضراء ذات غشائين فقط. تحتاج بلاستيدات الكريبتوفايت إلى نواتها للحفاظ على وجودها، ولا تستطيع أنواع دينوفيسيس التي تُزرع في مزارع الخلايا وحدها البقاء على قيد الحياة، لذا فمن المحتمل (وإن لم يُؤكد) أن بلاستيدة دينوفيسيس هي بلاستيدة مسروقة . إذا كان الأمر كذلك، فإن بلاستيدات دينوفيسيس تتلف، ويتعين على أنواع دينوفيسيس ابتلاع الكريبتوفايت باستمرار للحصول على بلاستيدات خضراء جديدة تحل محل القديمة. [ 53 ]

الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء

تحتوي البلاستيدات الخضراء، كغيرها من العضيات التكافلية الداخلية، على جينوم منفصل عن جينوم نواة الخلية . تم تحديد وجود الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء (cpDNA) بيوكيميائيًا عام 1959، [ 69 ] وتأكد ذلك بالمجهر الإلكتروني عام 1962. [ 70 ] وكشفت الاكتشافات التي تفيد بأن البلاستيدة الخضراء تحتوي على الريبوسومات [ 71 ] وتقوم بتخليق البروتين [ 72 ] أن البلاستيدة الخضراء شبه مستقلة جينيًا. تم تسلسل الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء لأول مرة عام 1986. [ 73 ] ومنذ ذلك الحين، تم تسلسل مئات من جينومات البلاستيدات الخضراء من أنواع مختلفة ، ولكنها في الغالب تلك الخاصة بالنباتات البرية والطحالب الخضراء - حيث أن الطحالب الزرقاء والحمراء ومجموعات الطحالب الأخرى ممثلة تمثيلاً ناقصًا للغاية، مما قد يُدخل بعض التحيز في وجهات النظر حول بنية ومحتوى الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء "النموذجي". [ 74 ]

تعديل · صورة
خريطة جينية تفاعلية للحمض النووي للبلاستيدات الخضراء من نبات التبغ (Nicotiana tabacum) . تمثل القطع ذات العلامات الداخلية الشريط B من الحمض النووي ، بينما تمثل القطع ذات العلامات الخارجية الشريط A. تشير الشقوق إلى الإنترونات .

التركيب الجزيئي

باستثناءات قليلة، تحتوي معظم البلاستيدات الخضراء على جينومها الكامل مُدمجًا في جزيء DNA دائري كبير واحد، [ 74 ] يبلغ طوله عادةً 120,000-170,000 زوجًا من القواعد [ 75 ] [ 76 ] [ 77 ] [ 18 ] وكتلته حوالي 80-130  مليون دالتون . [ 78 ] في حين أنه يمكن دائمًا تقريبًا تجميع جينومات البلاستيدات الخضراء في خريطة دائرية، فإن جزيئات DNA الفيزيائية داخل الخلايا تتخذ أشكالًا خطية ومتفرعة متنوعة. [ 74 ] [ 79 ] قد تحتوي البلاستيدات الخضراء الجديدة على ما يصل إلى 100 نسخة من جينومها، [ 75 ] على الرغم من أن عدد النسخ ينخفض ​​إلى حوالي 15-20 مع تقدم عمر البلاستيدات الخضراء. [ 80 ]

عادةً ما يتكثف الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء في نوى ، والتي قد تحتوي على نسخ متعددة من جينوم البلاستيدة الخضراء. يوجد العديد من النوى في كل بلاستيدة خضراء. [ 78 ] في الطحالب الحمراء البدائية ، تتجمع نوى الحمض النووي للبلاستيدة الخضراء في مركز البلاستيدة، بينما في النباتات الخضراء والطحالب الخضراء ، تنتشر النوى في جميع أنحاء الستروما . [ 81 ] لا يرتبط الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء بالهيستونات الحقيقية ، وهي بروتينات تُستخدم لضغط جزيئات الحمض النووي بإحكام في نوى حقيقيات النوى. [ 17 ] مع ذلك، في الطحالب الحمراء ، تعمل بروتينات مماثلة على ضغط كل حلقة من الحمض النووي للبلاستيدة الخضراء بإحكام في نواة . [ 81 ]

تحتوي العديد من جينومات البلاستيدات الخضراء على تكرارين معكوسين ، يفصلان قسمًا طويلًا أحادي النسخة (LSC) عن قسم قصير أحادي النسخة (SSC). [ 77 ] نادرًا ما يكون زوج معين من التكرارات المعكوسة متطابقًا، ولكنه دائمًا ما يكون متشابهًا جدًا، وهو ما يبدو أنه ناتج عن تطور متناسق . [ 74 ] تتفاوت التكرارات المعكوسة بشكل كبير في الطول، حيث يتراوح طول كل منها من 4000 إلى 25000 زوج قاعدي ، وتحتوي على ما لا يقل عن أربعة جينات أو ما يزيد عن 150 جينًا. [ 74 ] تُعد مناطق التكرار المعكوسة محفوظة بشكل كبير في النباتات البرية، وتتراكم فيها طفرات قليلة. [ 77 ] [ 82 ]

توجد تكرارات معكوسة مماثلة في جينومات البكتيريا الزرقاء وسلالتي البلاستيدات الخضراء الأخريين ( الزرقاء والحمراء )، مما يشير إلى أنها أقدم من البلاستيدات الخضراء. [ 74 ] فقدت بعض جينومات البلاستيدات الخضراء منذ ذلك الحين [ 82 ] [ 83 ] أو انقلبت فيها التكرارات المعكوسة (مما جعلها تكرارات مباشرة ). [ 74 ] من المحتمل أن تساعد التكرارات المعكوسة في استقرار بقية جينوم البلاستيدات الخضراء، حيث تميل جينومات البلاستيدات الخضراء التي فقدت بعض أجزاء التكرارات المعكوسة إلى إعادة الترتيب بشكل أكبر. [ 83 ]

إصلاح الحمض النووي وتضاعفه

في بلاستيدات طحلب فيزكوميتريلا باتنس ، يتفاعل بروتين إصلاح عدم تطابق الحمض النووي Msh1 مع بروتينات الإصلاح التأشيبية RecA وRecG للحفاظ على استقرار جينوم البلاستيدات. [ 84 ] وفي بلاستيدات نبات رشاد أذن الفأر، يحافظ بروتين RecA على سلامة الحمض النووي للبلاستيدات من خلال عملية يُحتمل أن تتضمن الإصلاح التأشيبية لتلف الحمض النووي . [ 85 ]

تضاعف الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء عبر آليات متعددة لحلقة D. مقتبس من ورقة كريشنان إن إم وراو بي جيه بعنوان "نهج مقارن لتوضيح تضاعف جينوم البلاستيدات الخضراء".

The mechanism for chloroplast DNA (cpDNA) replication has not been conclusively determined, but two main models have been proposed. Scientists have attempted to observe chloroplast replication via electron microscopy since the 1970s.[86][87] The results of the microscopy experiments led to the idea that chloroplast DNA replicates using a double displacement loop (D-loop). As the D-loop moves through the circular DNA, it adopts a theta intermediary form, also known as a Cairns replication intermediate, and completes replication with a rolling circle mechanism.[86][88] Transcription starts at specific points of origin. Multiple replication forks open up, allowing replication machinery to transcribe the DNA. As replication continues, the forks grow and eventually converge. The new cpDNA structures separate, creating daughter cpDNA chromosomes.

In addition to the early microscopy experiments, this model is also supported by the amounts of deamination seen in cpDNA.[86] Deamination occurs when an amino group is lost and is a mutation that often results in base changes. When adenine is deaminated, it becomes hypoxanthine. Hypoxanthine can bind to cytosine, and when the XC base pair is replicated, it becomes a GC (thus, an A → G base change).[89]

Over time, base changes in the DNA sequence can arise from deamination mutations. When adenine is deaminated, it becomes hypoxanthine, which can pair with cytosine. During replication, the cytosine will pair with guanine, causing an A --> G base change.

In cpDNA, there are several A → G deamination gradients. DNA becomes susceptible to deamination events when it is single stranded. When replication forks form, the strand not being copied is single stranded, and thus at risk for A → G deamination. Therefore, gradients in deamination indicate that replication forks were most likely present and the direction that they initially opened (the highest gradient is most likely nearest the start site because it was single stranded for the longest amount of time).[86] This mechanism is still the leading theory today; however, a second theory suggests that most cpDNA is actually linear and replicates through homologous recombination. It further contends that only a minority of the genetic material is kept in circular chromosomes while the rest is in branched, linear, or other complex structures.[86][88]

يفترض أحد النماذج المتنافسة لتضاعف الحمض النووي البلاستيدي (cpDNA) أن معظمه خطي ويشارك في إعادة التركيب المتماثل وبنى التضاعف المشابهة لبنى الحمض النووي الخطية والدائرية لفيروس T4 . [ 88 ] [ 90 ] وقد ثبت أن بعض النباتات، مثل الذرة، تمتلك حمضًا نوويًا بلاستيديًا خطيًا، وأن أنواعًا أخرى لا تزال تحتوي على بنى معقدة لم يفهمها العلماء بعد. [ 88 ] عندما أُجريت التجارب الأصلية على الحمض النووي البلاستيدي، لاحظ العلماء وجود بنى خطية، لكنهم عزوا هذه الأشكال الخطية إلى دوائر مكسورة. [ 88 ] إذا كانت البنى المتفرعة والمعقدة التي لوحظت في تجارب الحمض النووي البلاستيدي حقيقية وليست ناتجة عن تسلسل الحمض النووي الدائري أو الدوائر المكسورة، فإن آلية تضاعف حلقة D غير كافية لتفسير كيفية تضاعف هذه البنى. [ 88 ] في الوقت نفسه، لا يؤدي إعادة التركيب المتماثل إلى توسيع تدرجات A --> G المتعددة الموجودة في البلاستيدات. [ 86 ] بسبب الفشل في تفسير تدرج نزع الأمين بالإضافة إلى الأنواع النباتية العديدة التي ثبت أن لها cpDNA دائري، فإن النظرية السائدة لا تزال تعتقد أن معظم cpDNA دائري ومن المرجح أن يتضاعف عبر آلية حلقة D.

محتوى الجينات وتخليق البروتين

ربما احتوت البكتيريا الزرقاء السلفية التي أدت إلى ظهور البلاستيدات الخضراء على جينوم يضم أكثر من 3000 جين، ولكن لم يتبق منها سوى حوالي 100 جين في جينومات البلاستيدات الخضراء الحالية. [ 18 ] [ 22 ] [ 76 ] تشفر هذه الجينات وظائف متنوعة، معظمها يتعلق بتكوين البروتينات وعملية التمثيل الضوئي . وكما هو الحال في بدائيات النوى ، تُنظم الجينات في الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء في وحدات جينية (أوبرونات ). [ 22 ] وعلى عكس جزيئات الحمض النووي في بدائيات النوى ، تحتوي جزيئات الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء على إنترونات (كما هو الحال في الحمض النووي للميتوكوندريا في النباتات ، ولكن ليس في الحمض النووي للميتوكوندريا في الإنسان). [ 91 ]

تتشابه محتويات جينوم البلاستيدات الخضراء إلى حد كبير بين النباتات البرية. [ 77 ]

تقليل حجم جينوم البلاستيدات الخضراء ونقل الجينات

بمرور الوقت، انتقلت أجزاء كثيرة من جينوم البلاستيدات الخضراء إلى الجينوم النووي للعائل، [ 75 ] [ 76 ] [ 92 ] وهي عملية تُعرف باسم نقل الجينات التكافلي الداخلي . ونتيجةً لذلك، يكون جينوم البلاستيدات الخضراء مُختزلاً بشكل كبير مقارنةً بجينوم البكتيريا الزرقاء الحرة المعيشة. قد تحتوي البلاستيدات الخضراء على 60-100 جين، بينما غالبًا ما تحتوي البكتيريا الزرقاء على أكثر من 1500 جين في جينومها. [ 93 ] ومؤخرًا، تم اكتشاف بلاستيدة بدون جينوم، مما يُثبت أن البلاستيدات الخضراء يُمكن أن تفقد جينومها أثناء عملية نقل الجينات التكافلي الداخلي. [ 94 ]

يُعدّ انتقال الجينات التكافلي الداخلي أحد الطرق التي نعرف بها عن البلاستيدات الخضراء المفقودة في العديد من سلالات CASH. فحتى لو فُقدت البلاستيدة الخضراء في نهاية المطاف، فإن الجينات التي تبرعت بها لنواة المضيف السابق تبقى، مما يُقدّم دليلاً على وجود البلاستيدة المفقودة. على سبيل المثال، في حين أن الدياتومات (وهي كائنات غيرية التغذية ) تمتلك الآن بلاستيدة خضراء مشتقة من الطحالب الحمراء ، فإن وجود العديد من جينات الطحالب الخضراء في نواة الدياتوم يُقدّم دليلاً على أن سلف الدياتومات كان يمتلك بلاستيدة خضراء مشتقة من الطحالب الخضراء في مرحلة ما، والتي استُبدلت لاحقًا بالبلاستيدة الخضراء الحمراء. [ 50 ]

في النباتات البرية، يمكن تتبع ما بين 11 و14% من الحمض النووي في نواتها إلى البلاستيدات الخضراء، [ 46 ] وتصل هذه النسبة إلى 18% في نبات الرشاد ، وهو ما يعادل حوالي 4500 جين مُشفِّر للبروتين. [ 95 ] وقد لوحظت مؤخرًا بعض عمليات نقل الجينات من الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء إلى الجينوم النووي في النباتات البرية. [ 76 ]

من بين ما يقارب 3000 بروتين موجود في البلاستيدات الخضراء، يُشفّر حوالي 95% منها بواسطة جينات نووية. تتكون العديد من المركبات البروتينية في البلاستيدات الخضراء من وحدات فرعية من جينوم البلاستيدات الخضراء وجينوم النواة الخاص بالخلية المضيفة. ونتيجة لذلك، يجب تنسيق عملية تخليق البروتين بين البلاستيدات الخضراء والنواة. تخضع البلاستيدات الخضراء في الغالب للتحكم النووي، على الرغم من قدرتها على إرسال إشارات تنظم التعبير الجيني في النواة، وهو ما يُعرف بالإشارات الرجعية . [ 96 ] تشير الأبحاث الحديثة إلى أن أجزاءً من شبكة الإشارات الرجعية، التي كانت تُعتبر سمة مميزة للنباتات البرية، ظهرت بالفعل في سلف طحلب، [ 97 ] [ 98 ] [ 99 ] واندمجت في مجموعات جينية مشتركة التعبير في أقرب الطحالب صلةً بالنباتات البرية. [ 100 ]

تخليق البروتين

تعتمد عملية تخليق البروتين داخل البلاستيدات الخضراء على نوعين من بوليميراز الحمض النووي الريبوزي (RNA) . أحدهما مُشفّر بواسطة الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء، والآخر ذو أصل نووي . قد يتعرف هذان البوليميرازان على أنواع مختلفة من المحفزات داخل جينوم البلاستيدات الخضراء ويرتبطان بها. [ 101 ] تشبه الريبوسومات في البلاستيدات الخضراء الريبوسومات البكتيرية . [ 102 ]

استهداف البروتين واستيراده

بسبب انتقال العديد من جينات البلاستيدات الخضراء إلى النواة، فإن العديد من البروتينات التي كانت تُترجم في الأصل في البلاستيدات الخضراء تُصنّع الآن في سيتوبلازم الخلية النباتية. يجب توجيه هذه البروتينات مرة أخرى إلى البلاستيدات الخضراء، واستيرادها عبر غشائين على الأقل من أغشية البلاستيدات الخضراء. [ 103 ]

من المثير للاهتمام أن حوالي نصف البروتينات الناتجة عن الجينات المنقولة لا تعود إلى البلاستيدات الخضراء. فقد تحولت العديد منها إلى تكيفات وظيفية ، واكتسبت وظائف جديدة مثل المشاركة في انقسام الخلايا ، وتوجيه البروتينات ، وحتى مقاومة الأمراض . ووجدت بعض جينات البلاستيدات الخضراء مواقع جديدة في جينوم الميتوكوندريا، حيث أصبح معظمها جينات كاذبة غير وظيفية ، على الرغم من أن بعض جينات الحمض النووي الريبوزي الناقل (tRNA) لا تزال تعمل في الميتوكوندريا . [ 93 ] وتُوجَّه بعض البروتينات الناتجة عن الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء المنقولة إلى المسار الإفرازي ، [ 93 ] على الرغم من أن العديد من البلاستيدات الثانوية محاطة بغشاء خارجي مشتق من غشاء الخلية المضيفة ، وبالتالي فهي تقع خارج الخلية من الناحية الطوبولوجية، لأنه للوصول إلى البلاستيدة الخضراء من السيتوسول ، يجب عبور غشاء الخلية ، مما يعني الدخول إلى الفضاء خارج الخلوي . في هذه الحالات، تنتقل البروتينات المستهدفة للبلاستيدات الخضراء في البداية على طول المسار الإفرازي. [ 32 ]

لأن الخلية التي تكتسب البلاستيدة الخضراء كانت تحتوي بالفعل على الميتوكوندريا ( والبيروكسيسومات ، وغشاء خلوي للإفراز)، كان على مضيف البلاستيدة الخضراء الجديد أن يطور نظامًا فريدًا لاستهداف البروتين لتجنب إرسال بروتينات البلاستيدة الخضراء إلى العضية الخاطئة . [ 103 ]

يُطلق على طرفي عديد الببتيد اسم الطرف الأميني (N-terminus) والطرف الكربوكسيلي (C-terminus). يتكون هذا الببتيد من أربعة أحماض أمينية مرتبطة ببعضها. على اليسار يظهر الطرف الأميني (N-terminus) بمجموعته الأمينية (H2N) باللون الأخضر. أما الطرف الكربوكسيلي (C-terminus) باللون الأزرق، بمجموعته الكربوكسيلية (CO2H)، فيظهر على اليمين.
يُطلق على طرفي عديد الببتيد اسم الطرف الأميني ( N-terminus) والطرف الكربوكسيلي ( C-terminus) . [ 104 ] يتكون هذا الببتيد من أربعة أحماض أمينية مرتبطة ببعضها. على اليسار يظهر الطرف الأميني ( N-terminus ) بمجموعته الأمينية (H₂N ) باللون الأخضر. أما الطرف الكربوكسيلي (C-terminus) باللون الأزرق ، فيظهر على اليمين بمجموعته الكربوكسيلية ( CO₂H ).

في معظم الحالات، وليس جميعها، تُترجم بروتينات البلاستيدات الخضراء المشفرة نوويًا باستخدام ببتيد عبور قابل للانفصال يُضاف إلى الطرف الأميني (N-terminus) للبروتين الأولي. أحيانًا، يوجد تسلسل العبور على الطرف الكربوكسيلي (C-terminus) للبروتين، [ 105 ] أو داخل الجزء الوظيفي منه. [ 103 ]

بروتينات النقل وناقلات الغشاء

بعد تخليق عديد الببتيد في البلاستيدة الخضراء على الريبوسوم في السيتوسول ، يقوم إنزيم متخصص ببروتينات البلاستيدة الخضراء [ 106 ] بفسفرة العديد منها (وليس جميعها) في تسلسلات عبورها، أي بإضافة مجموعة فوسفات إليها. [ 103 ] تساعد الفسفرة العديد من البروتينات على الارتباط بعديد الببتيد، مما يمنعه من الانطواء المبكر. [ 103 ] وهذا مهم لأنه يمنع بروتينات البلاستيدة الخضراء من اتخاذ شكلها النشط وأداء وظائفها في البلاستيدة الخضراء في المكان الخطأ، وهو السيتوسول . [ 107 ] [ 108 ] في الوقت نفسه، يجب أن تحافظ هذه البروتينات على شكل كافٍ لكي تتعرف عليها البلاستيدة الخضراء. [ 107 ] كما تساعد هذه البروتينات أيضًا في استيراد عديد الببتيد إلى البلاستيدة الخضراء. [ 103 ]

من هنا، يجب أن تمر بروتينات البلاستيدات الخضراء المرتبطة بالستروما عبر مُركّبين بروتينيين: مُركّب TOC ، أو ناقل البروتين على الغشاء الخارجي للبلاستيدات الخضراء ، وناقل البروتين TIC ، أو ناقل البروتين على الغشاء الداخلي للبلاستيدات الخضراء . [ 103 ] من المُحتمل أن سلاسل عديد الببتيد في البلاستيدات الخضراء غالبًا ما تنتقل عبر المُركّبين في الوقت نفسه، ولكن يُمكن لمُركّب TIC أيضًا استعادة البروتينات الأولية المفقودة في الحيز بين الغشائين . [ 103 ]

بناء

صورة مجهرية إلكترونية نافذة لبلاستيدة خضراء. تظهر بوضوح حبيبات الثايلاكويدات والصفائح الرابطة بينها.

في النباتات البرية ، تكون البلاستيدات الخضراء عمومًا عدسية الشكل، بقطر يتراوح بين 3 و10 ميكرومترات وسماكة تتراوح بين 1 و3 ميكرومترات. [ 109 ] [ 18 ] يبلغ حجم البلاستيدات الخضراء في بادرات الذرة حوالي 20 ميكرومتر مكعب . [ 18 ] يوجد تنوع أكبر في أشكال البلاستيدات الخضراء بين الطحالب ، التي غالبًا ما تحتوي على بلاستيدة خضراء واحدة [ 12 ] يمكن أن تكون على شكل شبكة (مثل Oedogonium[ 110 ] أو كأس (مثل Chlamydomonas[ 111 ] أو حلزون شريطي الشكل حول حواف الخلية (مثل Spirogyra[ 112 ] أو أشرطة ملتوية قليلاً عند حواف الخلية (مثل Sirogonium ). [ 113 ] تحتوي بعض الطحالب على بلاستيدتين أخضرتين في كل خلية؛ تكون البلاستيدات الخضراء نجمية الشكل في جنس الزيغنيما ، [ 114 ] أو قد تتخذ شكل نصف الخلية في رتبة الدسميدياليس . [ 115 ] في بعض الطحالب، تشغل البلاستيدة الخضراء معظم الخلية، مع وجود جيوب للنواة والعضيات الأخرى، [ 12 ] على سبيل المثال، تمتلك بعض أنواع الكلوريلا بلاستيدة خضراء على شكل كأس تشغل جزءًا كبيرًا من الخلية. [ 116 ]

تحتوي جميع البلاستيدات الخضراء على ثلاثة أنظمة غشائية على الأقل: الغشاء الخارجي، والغشاء الداخلي، ونظام الثايلاكويد . يتوافق الغشاءان الدهنيان ثنائيا الطبقة الداخليان [ 117 ] اللذان يحيطان بجميع البلاستيدات الخضراء مع الغشاءين الخارجي والداخلي لجدار الخلية سالبة الغرام للبكتيريا الزرقاء السلفية [ 29 ] [ 118 ] [ 119 ] ، وليس مع غشاء الفاجوسوم من العائل، الذي فُقد على الأرجح [ 29 ] . قد تحتوي البلاستيدات الخضراء الناتجة عن التكافل الداخلي الثانوي على أغشية إضافية تحيط بهذه الأغشية الثلاثة [ 30 ] . يوجد داخل الغشاءين الخارجي والداخلي للبلاستيدة الخضراء ستروما البلاستيدة ، وهي سائل شبه هلامي [ 23 ] يشكل جزءًا كبيرًا من حجم البلاستيدة الخضراء، ويطفو فيه نظام الثايلاكويد.

البنية الدقيقة للبلاستيدات الخضراء. تحتوي البلاستيدات الخضراء على ثلاثة أنظمة غشائية متميزة على الأقل، ويمكن العثور على مجموعة متنوعة من الأشياء في حشوتها.
البنية الدقيقة للبلاستيدات الخضراء . تحتوي البلاستيدات الخضراء على ثلاثة أنظمة غشائية متميزة على الأقل، ويمكن العثور على مجموعة متنوعة من الأشياء في حشوتها .

توجد بعض المفاهيم الخاطئة الشائعة حول الأغشية الخارجية والداخلية للبلاستيدات الخضراء. فكثيراً ما يُستشهد بحقيقة أن البلاستيدات الخضراء محاطة بغشاء مزدوج كدليل على أنها من سلالة البكتيريا الزرقاء التكافلية. ويُفسر هذا غالباً على أنه يعني أن الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء هو نتاج انطواء غشاء الخلية المضيفة لتشكيل حويصلة تحيط بالبكتيريا الزرقاء الأصلية ، وهذا غير صحيح، فكلا غشائي البلاستيدة الخضراء متماثلان مع الأغشية المزدوجة الأصلية للبكتيريا الزرقاء. [ 29 ]

كثيرًا ما تُقارن الأغشية المزدوجة للبلاستيدات الخضراء بالأغشية المزدوجة للميتوكوندريا . هذه المقارنة غير دقيقة، إذ يُستخدم الغشاء الداخلي للميتوكوندريا لتشغيل مضخات البروتونات وإجراء الفسفرة التأكسدية لتوليد طاقة ATP . البنية الوحيدة في البلاستيدات الخضراء التي يمكن اعتبارها مماثلة له هي نظام الثايلاكويد الداخلي. مع ذلك، من حيث اتجاه التدفق، يكون اتجاه تدفق أيونات الهيدروجين (H +) في البلاستيدات الخضراء معاكسًا لاتجاه الفسفرة التأكسدية في الميتوكوندريا. [ 23 ] [ 120 ] إضافةً إلى ذلك، من حيث الوظيفة، لا يوجد نظير للغشاء الداخلي للبلاستيدات الخضراء، الذي ينظم مرور الأيضات ويُصنّع بعض المواد، في الميتوكوندريا. [ 23 ]

الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء

يُعد الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء غشاءً شبه مسامي يسمح للجزيئات الصغيرة والأيونات بالانتشار عبره بسهولة. [ 121 ] ومع ذلك، فهو غير منفذ للبروتينات الأكبر حجمًا ، لذا يجب نقل عديدات ببتيد البلاستيدة الخضراء التي يتم تصنيعها في سيتوبلازم الخلية عبر الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء بواسطة مُركب TOC ، أو ناقل النقل الموجود على الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء . [ 103 ]

أحيانًا تبرز أغشية البلاستيدات الخضراء إلى السيتوبلازم، مُشكّلةً ما يُعرف بالسترومول ، أو الأنبوب الحاوي على السترومول . تُعدّ السترومولات نادرة جدًا في البلاستيدات الخضراء، بينما هي أكثر شيوعًا في أنواع البلاستيدات الأخرى ، مثل البلاستيدات الملونة والبلاستيدات النشوية في البتلات والجذور على التوالي. [ 122 ] [ 123 ] قد يكون وجودها لزيادة مساحة سطح البلاستيدة الخضراء لنقل المواد عبر الغشاء، نظرًا لتفرّعها وتشابكها مع الشبكة الإندوبلازمية . [ 124 ] عند رصدها لأول مرة عام 1962، اعتبر بعض علماء الأحياء النباتية هذه التراكيب مُصطنعة، زاعمين أن السترومولات ما هي إلا بلاستيدات خضراء ذات شكل غريب مع مناطق مُنقبضة أو بلاستيدات خضراء مُنقسمة . [ 125 ] ومع ذلك، هناك مجموعة متزايدة من الأدلة على أن السترومولات هي سمات وظيفية أساسية لبلاستيدات الخلايا النباتية، وليست مجرد نتاج ثانوي. [ 126 ]

الحيز بين الغشائين وجدار الببتيدوغليكان

بدلاً من وجود مساحة بين الغشائين، تحتوي الطحالب الزرقاء على جدار من الببتيدوغليكان بين أغشية البلاستيدات الخضراء الداخلية والخارجية.

عادةً، توجد مسافة رقيقة بين الغشائين يبلغ سمكها حوالي 10-20 نانومتر بين الغشائين الخارجي والداخلي للبلاستيدات الخضراء. [ 127 ]

تحتوي بلاستيدات الطحالب الزرقاء على طبقة من الببتيدوغليكان بين غشائي البلاستيدة. وهي تُطابق جدار الخلية الببتيدوغليكاني لأسلافها من البكتيريا الزرقاء ، والذي يقع بين غشائي خليتيها. تُسمى هذه البلاستيدات بالبلاستيدات الميورو (من الكلمة اللاتينية "mura" التي تعني "جدار"). كان يُعتقد أن بلاستيدات أخرى قد فقدت جدار البكتيريا الزرقاء، تاركةً فراغًا بين غشائي غلاف البلاستيدة، [ 23 ] ولكن وُجد هذا الفراغ لاحقًا أيضًا في الطحالب والنباتات الوعائية والسراخس. [ 128 ]

الغشاء الداخلي للبلاستيدة الخضراء

يُحيط الغشاء الداخلي للبلاستيدة الخضراء بالستروما، وينظم مرور المواد من وإلى البلاستيدة. بعد مرور عديدات الببتيد عبر مُركّب TOC في الغشاء الخارجي للبلاستيدة، يجب أن تمر عبر مُركّب TIC ( الناقل الموجود على الغشاء الداخلي للبلاستيدة ) الموجود في الغشاء الداخلي للبلاستيدة . [ 103 ]

بالإضافة إلى تنظيم مرور المواد، فإن الغشاء الداخلي للبلاستيدات الخضراء هو المكان الذي يتم فيه تصنيع الأحماض الدهنية والدهون والكاروتينات . [ 23 ]

الشبكة المحيطية

تحتوي بعض البلاستيدات الخضراء على بنية تُسمى الشبكة المحيطية للبلاستيدة الخضراء . [ 127 ] وهي شائعة في بلاستيدات نباتات C4 ، كما وُجدت أيضًا في بعض كاسيات البذور C3 ، [ 23 ] وحتى في بعض عاريات البذور . [ 129 ] تتكون الشبكة المحيطية للبلاستيدة الخضراء من متاهة من الأنابيب والحويصلات الغشائية المتصلة بالغشاء الداخلي للبلاستيدة ، والتي تمتد إلى السائل الستروما الداخلي للبلاستيدة. يُعتقد أن وظيفتها هي زيادة مساحة سطح البلاستيدة لنقل المواد عبر الغشاء بين الستروما وسيتوبلازم الخلية . قد تعمل الحويصلات الصغيرة التي تُلاحظ أحيانًا كحويصلات نقل لنقل المواد بين الثايلاكويدات والفراغ بين الغشائين. [ 130 ]

ستروما

يُطلق على السائل المائي الغني بالبروتين ، [ 23 ] والقاعدي ، [ 120 ] الموجود داخل الغشاء الداخلي للبلاستيدة الخضراء وخارج حيز الثايلاكويد اسم الستروما، [ 23 ] وهو ما يُقابل السيتوسول في البكتيريا الزرقاء الأصلية . وتوجد فيه نوى الحمض النووي للبلاستيدة الخضراء ، وريبوسومات البلاستيدة الخضراء ، ونظام الثايلاكويد مع البلاستوغلوبولات ، وحبيبات النشا ، والعديد من البروتينات . وتحدث دورة كالفن ، التي تُثبّت ثاني أكسيد الكربون إلى غلوكونو-3-فوسفات، في الستروما.

ريبوسومات البلاستيدات الخضراء

مقارنة بين ريبوسوم البلاستيدات الخضراء (باللون الأخضر) وريبوسوم البكتيريا (باللون الأصفر). تم تمييز السمات المهمة المشتركة بين الريبوسومات والبلاستيدات الخضراء، بينما تم تحديد السمات الفريدة لكل منهما.
مقارنة بين ريبوسوم البلاستيدات الخضراء (باللون الأخضر) وريبوسوم البكتيريا (باللون الأصفر). تم تمييز السمات المهمة المشتركة بين الريبوسومات والبلاستيدات الخضراء، بينما تم تحديد السمات الفريدة لكل منهما.

تحتوي البلاستيدات الخضراء على ريبوسومات خاصة بها، تستخدمها لتخليق جزء صغير من بروتيناتها. يبلغ حجم ريبوسومات البلاستيدات الخضراء حوالي ثلثي حجم ريبوسومات السيتوبلازم (حوالي 17 نانومتر مقابل 25 نانومتر ). [ 127 ] تقوم هذه الريبوسومات بأخذ الحمض النووي الريبوزي الرسول (mRNA) المنسوخ من الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء وترجمته إلى بروتين. على الرغم من تشابهها مع ريبوسومات البكتيريا ، [ 17 ] إلا أن عملية الترجمة في البلاستيدات الخضراء أكثر تعقيدًا منها في البكتيريا، لذا تتضمن ريبوسومات البلاستيدات الخضراء بعض الخصائص الفريدة للبلاستيدات الخضراء. [ 131 ] [ 132 ]

تفتقر وحدات الحمض النووي الريبوزي الصغيرة في العديد من الطحالب الخضراء واليوجلينيات إلى أنماط التعرف على تسلسل شاين-دالغارنو ، [ 133 ] والذي يُعتبر ضروريًا لبدء الترجمة في معظم البلاستيدات الخضراء والكائنات بدائية النواة . [ 134 ] [ 135 ] ونادرًا ما يُلاحظ هذا الفقدان في بلاستيدات أخرى وكائنات بدائية النواة. [ 133 ] [ 136 ] ويوجد حمض نووي ريبوزي إضافي 4.5S ذو تماثل مع الذيل 3' للحمض النووي الريبوزي 23S في النباتات "الراقية". [ 132 ]

بلاستوغلوبولين

البلاستوغلوبوليات ( مفردها بلاستوغلوبولوس ، وتُكتب أحيانًا بلاستوغلوبوليات ) هي فقاعات كروية من الدهون والبروتينات [ 23 ] يبلغ قطرها حوالي 45-60 نانومترًا. [ 137 ] وهي محاطة بطبقة أحادية من الدهون . [ 137 ] توجد البلاستوغلوبوليات في جميع البلاستيدات الخضراء، [ 127 ] ولكنها تصبح أكثر شيوعًا عندما تتعرض البلاستيدة الخضراء للإجهاد التأكسدي ، [ 137 ] أو عندما تتقدم في العمر وتتحول إلى جيرونتوبلاست . [ 23 ] كما تُظهر البلاستوغلوبوليات تباينًا أكبر في الحجم في ظل هذه الظروف. [ 137 ] وهي شائعة أيضًا في الإتيوبلاستات ، ولكن يقل عددها مع نضوج الإتيوبلاستات إلى بلاستيدات خضراء. [ 137 ]

تحتوي البلاستوغلوبولات على كل من البروتينات التركيبية والإنزيمات المشاركة في تخليق الدهون واستقلابها . وهي تحتوي على أنواع عديدة من الدهون ، بما في ذلك البلاستوكينون وفيتامين هـ والكاروتينات والكلوروفيل . [ 137 ]

كان يُعتقد سابقًا أن البلاستوغلوبولات تطفو بحرية في الستروما ، ولكن يُعتقد الآن أنها مرتبطة بشكل دائم إما بالثايلاكويد أو ببلاستوغلوبول آخر مرتبط بالثايلاكويد، وهو تكوين يسمح للبلاستوغلوبول بتبادل محتوياته مع شبكة الثايلاكويد. [ 137 ] في البلاستيدات الخضراء الطبيعية، توجد الغالبية العظمى من البلاستوغلوبولات بشكل منفرد، مرتبطة مباشرة بالثايلاكويد الأصلي. أما في البلاستيدات القديمة أو المُجهدة، فتميل البلاستوغلوبولات إلى التواجد في مجموعات أو سلاسل مترابطة، وتبقى دائمًا مثبتة بالثايلاكويد. [ 137 ]

تتشكل البلاستوغلوبوليات عندما تظهر فقاعة بين طبقات الغشاء الدهني ثنائي الطبقة للغشاء الثايلاكويدي، أو تتبرعم من بلاستوغلوبوليات موجودة، مع أنها لا تنفصل أبدًا وتطفو إلى الستروما. [ 137 ] تتشكل جميع البلاستوغلوبوليات تقريبًا على الحواف شديدة الانحناء لأقراص أو صفائح الثايلاكويد أو بالقرب منها . كما أنها أكثر شيوعًا على ثايلاكويدات الستروما منها على ثايلاكويدات الحبيبات . [ 137 ]

صورة مجهرية إلكترونية ناقلة لـ Chlamydomonas reinhardtii، وهي طحالب خضراء تحتوي على بيرينويد محاط بالنشا.
صورة مجهرية إلكترونية ناقلة لـ Chlamydomonas reinhardtii ، وهي طحالب خضراء تحتوي على بيرينويد محاط بالنشا.

حبيبات النشا

تُعدّ حبيبات النشا شائعة جدًا في البلاستيدات الخضراء، حيث تشغل عادةً 15% من حجم العضية، [ 138 ] مع ذلك، في بعض البلاستيدات الأخرى مثل البلاستيدات النشوية ، قد تكون كبيرة بما يكفي لتشويه شكل العضية. [ 127 ] حبيبات النشا هي ببساطة تجمعات من النشا في الستروما، وليست محاطة بغشاء. [ 127 ]

تظهر حبيبات النشا وتنمو على مدار اليوم، حيث تقوم البلاستيدات الخضراء بتخليق السكريات ، وتُستهلك ليلاً لتوفير الطاقة اللازمة للتنفس واستمرار تصدير السكر إلى اللحاء ، [ 139 ] على الرغم من أنه في البلاستيدات الخضراء الناضجة، من النادر أن تُستهلك حبيبة النشا بالكامل أو أن تتراكم حبيبة جديدة. [ 138 ]

تختلف حبيبات النشا في تركيبها وموقعها بين سلالات البلاستيدات الخضراء المختلفة. ففي الطحالب الحمراء ، توجد حبيبات النشا في السيتوبلازم وليس في البلاستيدات الخضراء. [ 140 ] أما في نباتات C4 ، فتفتقر بلاستيدات الميزوفيل ، التي لا تُصنّع السكريات، إلى حبيبات النشا. [ 23 ]

روبيسكو

إن إنزيم روبيسكو ، الموضح هنا في نموذج ملء الفراغ ، هو الإنزيم الرئيسي المسؤول عن تثبيت الكربون في البلاستيدات الخضراء.
إن إنزيم روبيسكو، الموضح هنا في نموذج ملء الفراغ، هو الإنزيم الرئيسي المسؤول عن تثبيت الكربون في البلاستيدات الخضراء.

تحتوي حشوة البلاستيدات الخضراء على العديد من البروتينات، إلا أن أكثرها شيوعًا وأهمية هو إنزيم روبيسكو ، الذي يُحتمل أن يكون أيضًا البروتين الأكثر وفرة على سطح الأرض. [ 120 ] إنزيم روبيسكو هو الإنزيم المسؤول عن تثبيت ثاني أكسيد الكربون وتحويله إلى جزيئات سكر. في نباتات C3 ، يتواجد إنزيم روبيسكو بكثرة في جميع البلاستيدات الخضراء، بينما في نباتات C4 ، يقتصر وجوده على بلاستيدات غمد الحزمة ، حيث تتم دورة كالفن . [ 141 ]

البيرينويدات

تحتوي البلاستيدات الخضراء في بعض نباتات القرنيات [ 142 ] والطحالب على تراكيب تُسمى البيرينويدات . وهي غير موجودة في النباتات الراقية. [ 143 ] البيرينويدات أجسام كروية الشكل تقريبًا ذات معامل انكسار عالٍ، وهي موقع لتراكم النشا في النباتات التي تحتوي عليها. تتكون من مادة أساسية معتمة للإلكترونات، محاطة بصفيحتين نشويتين نصف كرويتين. يتراكم النشا مع نضوج البيرينويدات. [ 144 ] في الطحالب التي تمتلك آليات تركيز الكربون ، يوجد إنزيم روبيسكو في البيرينويدات. يمكن أن يتراكم النشا أيضًا حول البيرينويدات عندما يكون ثاني أكسيد الكربون نادرًا . [ 143 ] يمكن للبيرينويدات أن تنقسم لتكوين بيرينويدات جديدة، أو أن تُنتج من الصفر . [ 144 ] [ 145 ]

نظام الثايلاكويد

صورة مجهرية إلكترونية ماسحة ناقلة لبلاستيدة خضراء (أعلى): شريحة مقطعية بسمك 10 نانومتر من بلاستيدة خضراء في الخس، تم الحصول عليها بواسطة مجهر إلكتروني ماسح ناقل. تتصل حزم الجرانا ببعضها البعض بواسطة أغشية ثايلاكويد غير متراصة في الستروما، تُسمى "صفائح الستروما". أما الجسيمات المستديرة المرتبطة بالثايلاكويدات فهي بلاستوغلوبولات. مقياس الرسم = 200  نانومتر. انظر [ 146 ] . (أسفل): نموذج ثلاثي الأبعاد واسع النطاق تم إنشاؤه من تجزئة عمليات إعادة البناء المقطعية بواسطة مجهر إلكتروني ماسح ناقل. الجرانا = أصفر؛ صفائح الستروما = أخضر؛ بلاستوغلوبولات = بنفسجي؛ غلاف البلاستيدة الخضراء = أزرق. انظر [ 146 ] .

الثايلاكويدات (تُكتب أحيانًا thylakoïds[ 147 ] هي أكياس صغيرة مترابطة تحتوي على الأغشية التي تحدث عليها تفاعلات الضوء في عملية التمثيل الضوئي. كلمة ثايلاكويد مشتقة من الكلمة اليونانية thylakos التي تعني "كيس". [ 148 ]

يُعلق داخل حشوة البلاستيدات الخضراء نظام الثايلاكويد ، وهو عبارة عن مجموعة ديناميكية للغاية من الأكياس الغشائية تُسمى الثايلاكويدات ، حيث يوجد الكلوروفيل وتحدث تفاعلات الضوء في عملية التمثيل الضوئي . [ 11 ] في معظم بلاستيدات النباتات الوعائية ، تُرتّب الثايلاكويدات في حزم تُسمى الجرانا، [ 149 ] بينما في بعض بلاستيدات نباتات C4 [ 141 ] وبعض بلاستيدات الطحالب ، تكون الثايلاكويدات طافية بحرية. [ 12 ]

بنية الثايلاكويد

بنية تجميع الحبيبات والستروما: النموذج السائد لتجميع الحبيبات والستروما هو عبارة عن أكوام من الثايلاكويدات الحبيبية ملفوفة بثايلاكويدات ستروما حلزونية يمينية، والتي تتصل بصفائح كبيرة متوازية من الثايلاكويدات الستروما والحلزونات اليمينية المجاورة بواسطة هياكل حلزونية يسارية. (استنادًا إلى [ 146 ] ).

باستخدام المجهر الضوئي ، يُمكن بالكاد رؤية حبيبات خضراء صغيرة تُسمى الجرانا . [ 127 ] وباستخدام المجهر الإلكتروني ، أصبح من الممكن رؤية نظام الثايلاكويد بتفصيل أكبر، مما كشف أنه يتكون من طبقات من الثايلاكويدات المسطحة التي تُشكل الجرانا، وثايلاكويدات سترومية طويلة مترابطة تربط بين الجرانا المختلفة. [ 127 ] وفي المجهر الإلكتروني النافذ ، تظهر أغشية الثايلاكويد على شكل أشرطة متناوبة فاتحة وداكنة، بسمك 8.5 نانومتر. [ 127 ]

لقد كان التركيب ثلاثي الأبعاد لنظام غشاء الثايلاكويد موضع جدل. وقد طُرحت نماذج عديدة، أبرزها النموذج الحلزوني ، حيث تُغلّف حزم أغشية الثايلاكويد الجرانا بأغشية ثايلاكويد ستروما حلزونية. [ 150 ] وهناك نموذج آخر يُعرف باسم "نموذج التشعب"، والذي استند إلى أول دراسة تصوير مقطعي إلكتروني لأغشية الثايلاكويد النباتية، حيث يُصوّر أغشية الستروما على أنها صفائح عريضة متعامدة مع أعمدة الجرانا، تتفرع إلى أقراص متوازية متعددة تُشكّل مجموعة الجرانا-ستروما. [ 151 ] وقد حظي النموذج الحلزوني بدعم من عدة دراسات إضافية، [ 149 ] [ 152 ] ولكن في نهاية المطاف، تبيّن في عام 2019 أن خصائص كل من النموذجين الحلزوني ونموذج التشعب تتكامل مع خصائص وصلات الغشاء الحلزونية اليسارية المكتشفة حديثًا. [ 146 ] على الأرجح لتسهيل الأمر، لا يزال نظام الثايلاكويد يُصوَّر عادةً بنماذج "المحور والأشعة" القديمة حيث تتصل الجرانا ببعضها البعض بواسطة أنابيب من الثايلاكويدات السدوية. [ 153 ]

تتكون الجرانا من طبقات من الثايلاكويدات الجرانا الدائرية المسطحة التي تشبه الفطائر. يمكن أن تحتوي كل جرانا على ما بين اثنين إلى مئة ثايلاكويد، [ 127 ] على الرغم من أن الجرانا التي تحتوي على 10-20 ثايلاكويد هي الأكثر شيوعًا. [ 149 ] يلتف حول الجرانا العديد من الثايلاكويدات السدوية الحلزونية اليمنى المتوازية، والمعروفة أيضًا باسم الصفائح أو الثايلاكويدات الصفائحية. تصعد هذه الحلزونات بزاوية 20 درجة تقريبًا، وتتصل بكل ثايلاكويد جرانا عند وصلة شق تشبه الجسر. [ 149 ] [ 152 ] [ 146 ]

تمتد صفائح اللحمة على شكل صفائح كبيرة عمودية على أعمدة الجرانا. وتتصل هذه الصفائح باللوالب اليمنى إما مباشرةً أو عبر تشعبات تُشكّل أسطح غشائية لولبية يسرى. [ 146 ] تتميز الأسطح اللولبية اليسرى بزاوية ميل مماثلة للحلزونات اليمنى (حوالي 20 درجة)، ولكن بربع طول اللفة. يوجد ما يقارب 4 وصلات لولبية يسرى في كل جرانا، مما ينتج عنه مصفوفة متوازنة من حيث طول اللفة لأسطح غشائية لولبية يمنى ويسرى ذات أنصاف أقطار وطول لفات مختلفة، مما يُعزز الشبكة بأقل طاقة سطحية وانحناء. [ 146 ] على الرغم من احتواء أجزاء مختلفة من نظام الثايلاكويد على بروتينات غشائية مختلفة، إلا أن أغشية الثايلاكويد متصلة، ويُشكّل حيز الثايلاكويد الذي تُحيط به متاهة متصلة واحدة. [ 149 ]

تركيب الثايلاكويد

تتضمن أغشية الثايلاكويد معقدات بروتينية مهمة تُجري تفاعلات الضوء في عملية البناء الضوئي . يحتوي النظام الضوئي الثاني والنظام الضوئي الأول على معقدات حصاد الضوء مع الكلوروفيل والكاروتينات التي تمتص طاقة الضوء وتستخدمها لتنشيط الإلكترونات. تستخدم الجزيئات الموجودة في غشاء الثايلاكويد الإلكترونات النشطة لضخ أيونات الهيدروجين إلى حيز الثايلاكويد، مما يُخفض درجة الحموضة ويجعله حمضيًا. إن إنزيم ATP سينثاز هو معقد بروتيني كبير يستغل تدرج تركيز أيونات الهيدروجين في حيز الثايلاكويد لتوليد طاقة ATP أثناء تدفق أيونات الهيدروجين عائدةً إلى الستروما - تمامًا مثل توربين السد. [ 120 ]

يوجد نوعان من الثايلاكويدات: الثايلاكويدات الحبيبية، التي تترتب في حبيبات، والثايلاكويدات السدوية، التي تتصل بالستروما . الثايلاكويدات الحبيبية عبارة عن أقراص دائرية مسطحة الشكل، يتراوح قطرها بين 300 و600 نانومتر. أما الثايلاكويدات السدوية فهي عبارة عن صفائح حلزونية الشكل تلتف حول الحبيبات. [ 149 ] تحتوي الأسطح العلوية والسفلية المسطحة للثايلاكويدات الحبيبية على مُركب بروتين النظام الضوئي الثاني المسطح نسبيًا فقط. وهذا يسمح لها بالتراص بإحكام، مُشكلةً حبيبات ذات طبقات عديدة من غشاء مُتراص بإحكام، يُسمى الغشاء الحبيبي، مما يزيد من استقرارها ومساحة سطحها لامتصاص الضوء. [ 149 ]

في المقابل، يُعدّ كلٌّ من النظام الضوئي الأول وإنزيم ATP synthase مُركّبات بروتينية كبيرة تبرز في اللحمة. لا يمكنها أن تتسع داخل أغشية الحبيبات المتراصة، لذا توجد في غشاء الثايلاكويد اللحمي - حواف أقراص الثايلاكويد الحبيبية والثايلاكويدات اللحمية. قد تعمل هذه المُركّبات البروتينية الكبيرة كفواصل بين صفائح الثايلاكويدات اللحمية. [ 149 ]

يتأثر عدد أغشية الثايلاكويد ومساحة أغشية الثايلاكويد الكلية في البلاستيدة الخضراء بالتعرض للضوء. تحتوي البلاستيدات الخضراء المظللة على حبيبات أكبر وأكثر عددًا ، ذات مساحة غشاء ثايلاكويد أكبر، مقارنةً بالبلاستيدات الخضراء المعرضة للضوء الساطع، والتي تحتوي على حبيبات أصغر وأقل عددًا، ومساحة ثايلاكويد أقل. يمكن أن يتغير حجم أغشية الثايلاكويد في غضون دقائق من التعرض للضوء أو إزالته. [ 130 ]

الأصباغ وألوان البلاستيدات الخضراء

تحتوي الأنظمة الضوئية المدمجة في أغشية الثايلاكويد للبلاستيدات الخضراء على أصباغ ضوئية متنوعة تمتص الطاقة الضوئية وتنقلها . وتختلف أنواع هذه الأصباغ باختلاف مجموعات البلاستيدات الخضراء، وهي المسؤولة عن تنوع ألوانها. أما أنواع البلاستيدات الأخرى ، مثل البلاستيدات عديمة اللون والبلاستيدات الملونة ، فتحتوي على كمية قليلة من الكلوروفيل ولا تقوم بعملية التمثيل الضوئي.

يُظهر التحليل الكروماتوغرافي الورقي لبعض مستخلصات أوراق السبانخ الأصباغ المختلفة الموجودة في البلاستيدات الخضراء.
يُظهر التحليل الكروماتوغرافي الورقي لبعض مستخلصات أوراق السبانخ الأصباغ المختلفة الموجودة في البلاستيدات الخضراء.

الكلوروفيل

يوجد الكلوروفيل أ في جميع البلاستيدات الخضراء، وكذلك في أسلافها من البكتيريا الزرقاء . الكلوروفيل أ صبغة زرقاء مخضرة [ 154 ] مسؤولة جزئيًا عن إعطاء معظم البكتيريا الزرقاء والبلاستيدات الخضراء لونها. توجد أشكال أخرى من الكلوروفيل، مثل الأصباغ المساعدة : الكلوروفيل ب ، والكلوروفيل ج ، والكلوروفيل د ، [ 12 ] والكلوروفيل و .

الكلوروفيل ب هو صبغة خضراء زيتونية اللون توجد فقط في بلاستيدات النباتات والطحالب الخضراء ، وأي بلاستيدات ثانوية ناتجة عن التكافل الداخلي الثانوي للطحالب الخضراء، وبعض أنواع البكتيريا الزرقاء . [ 12 ] إن الكلوروفيل أ والكلوروفيل ب معًا هما ما يمنحان معظم بلاستيدات النباتات والطحالب الخضراء لونها الأخضر. [ 154 ]

يوجد الكلوروفيل ج بشكل رئيسي في البلاستيدات الخضراء التكافلية الثانوية التي نشأت من طحلب أحمر ، على الرغم من أنه لا يوجد في بلاستيدات الطحالب الحمراء نفسها. كما يوجد الكلوروفيل ج في بعض الطحالب الخضراء والبكتيريا الزرقاء . [ 12 ]

الكلوروفيل د والكلوروفيل و هما صبغتان موجودتان فقط في بعض أنواع البكتيريا الزرقاء. [ 12 ] [ 155 ]

الكاروتينات

يحتوي طحلب Delesseria sanguinea الأحمر على بلاستيدات خضراء تحتوي على أصباغ حمراء مثل الفيكوإريثيرين التي تخفي الكلوروفيل أ الأزرق والأخضر.
يحتوي طحلب Delesseria sanguinea الأحمرعلى بلاستيدات خضراء تحتوي على أصباغ حمراء مثل الفيكوإريثيرين التي تخفي الكلوروفيل أ الأزرق والأخضر. [ 39 ]

بالإضافة إلى الكلوروفيل، توجد مجموعة أخرى من الأصباغ الصفراء البرتقالية [ 154 ] تُسمى الكاروتينات في الأنظمة الضوئية. يوجد حوالي ثلاثين كاروتينًا ضوئيًا. [ 156 ] تُساعد هذه الكاروتينات على نقل وتبديد الطاقة الزائدة، [ 12 ] وأحيانًا تُطغى ألوانها الزاهية على اللون الأخضر للكلوروفيل، كما هو الحال في فصل الخريف عندما تتغير ألوان أوراق بعض النباتات البرية . [ 157 ] يُعد بيتا كاروتين كاروتينًا أحمر برتقاليًا زاهيًا يوجد في جميع البلاستيدات الخضراء تقريبًا، مثل الكلوروفيل أ . [ 12 ] كما تُعد الزانثوفيل ، وخاصة الزياكسانثين البرتقالي المحمر ، شائعة أيضًا. [ 156 ] توجد العديد من أشكال الكاروتينات الأخرى التي لا توجد إلا في مجموعات معينة من البلاستيدات الخضراء. [ 12 ]

الفيكوبيلينات

الفيكوبيلينات هي مجموعة ثالثة من الأصباغ الموجودة في البكتيريا الزرقاء ، والبلاستيدات الخضراء في الطحالب الزرقاء ، والطحالب الحمراء ، والطحالب الكريبتوفيتية . [ 12 ] [ 158 ] تتواجد الفيكوبيلينات بجميع الألوان، مع أن الفيكوإريثيرين هو أحد الأصباغ التي تُكسب العديد من الطحالب الحمراء لونها الأحمر. [ 159 ] غالبًا ما تتجمع الفيكوبيلينات في مُركبات بروتينية كبيرة نسبيًا يبلغ قطرها حوالي 40 نانومترًا تُسمى الفيكوبيلوسومات . [ 12 ] ومثل النظام الضوئي الأول وإنزيم ATP سينثاز ، تبرز الفيكوبيلوسومات في الستروما، مانعةً تراكم الثايلاكويدات في البلاستيدات الخضراء للطحالب الحمراء. [ 12 ] أما في البلاستيدات الخضراء للطحالب الكريبتوفيتية وبعض أنواع البكتيريا الزرقاء، فلا تتجمع أصباغ الفيكوبيلين في الفيكوبيلوسومات، بل تُحفظ في حيز الثايلاكويدات. [ 12 ]

أصباغ التمثيل الضوئي. وجود الأصباغ في جميع مجموعات البلاستيدات الخضراء والبكتيريا الزرقاء.

تمثل الخلايا الملونة وجود الصبغة. Chl = الكلوروفيل [ 12 ] [ 156 ] [ 158 ]

الكلوروفيل أ الكلور ب الكلوروفيل ج Chl d and f الزانثوفيلألفا كاروتينبيتا كاروتينالفيكوبيلينات
النباتات البرية
الطحالب الخضراء
اليوجلينوفايت والكلوراراكنيوفيت
الطحالب الحمراء متعددة الخلايا
الطحالب الحمراء وحيدة الخلية
الهابتوفايتات والدينوفيتات
النباتات الكريبتوفيتية
النباتات الزرقاء
البكتيريا الزرقاء

البلاستيدات الخضراء المتخصصة في نباتات C4

تتميز العديد من نباتات C4 بترتيب خلايا النسيج المتوسط ​​وخلايا غمد الحزمة بشكل شعاعي حول عروق أوراقها. ويحتوي هذان النوعان من الخلايا على أنواع مختلفة من البلاستيدات الخضراء المتخصصة في جزء معين من عملية التمثيل الضوئي.
تتميز العديد من نباتات C4 بترتيب خلايا النسيج المتوسط ​​وخلايا غمد الحزمة بشكل شعاعي حول عروق أوراقها . ويحتوي هذان النوعان من الخلايا على أنواع مختلفة من البلاستيدات الخضراء المتخصصة في جزء معين من عملية التمثيل الضوئي .

لتثبيت ثاني أكسيد الكربون وتحويله إلى جزيئات سكر في عملية البناء الضوئي ، تستخدم البلاستيدات الخضراء إنزيمًا يُسمى روبيسكو . يواجه روبيسكو صعوبة في التمييز بين ثاني أكسيد الكربون والأكسجين ، لذا عند ارتفاع تركيزات الأكسجين، يبدأ روبيسكو بإضافة الأكسجين عن طريق الخطأ إلى جزيئات السكر الأولية. ينتج عن ذلك هدر طاقة ATP وإطلاق ثاني أكسيد الكربون ، دون إنتاج أي سكر. تُعد هذه مشكلة كبيرة، لأن الأكسجين يُنتج من التفاعلات الضوئية الأولية في عملية البناء الضوئي، مما يُسبب مشاكل لاحقة في دورة كالفن التي تستخدم روبيسكو. [ 160 ]

طوّرت نباتات C4 طريقةً لحلّ هذه المشكلة، وذلك بفصل تفاعلات الضوء عن دورة كالفن مكانيًا.تحدث تفاعلات الضوء، التي تخزّن طاقة الضوء في جزيئات ATP وNADPH، في خلايا النسيج المتوسط ​​لأوراق نباتات C4 . أما دورة كالفن، التي تستخدم الطاقة المخزّنة لصنع السكر بواسطة إنزيم روبيسكو، فتحدث في خلايا غمد الحزمة ، وهي طبقة من الخلايا تحيط بعرق في الورقة . [ 160 ]

نتيجةً لذلك، تتخصص البلاستيدات الخضراء في خلايا النسيج المتوسط ​​C4 وخلايا غمد الحزمة لكل مرحلة من مراحل عملية البناء الضوئي. في خلايا النسيج المتوسط، تتخصص البلاستيدات الخضراء في التفاعلات الضوئية، لذا فهي تفتقر إلى إنزيم روبيسكو ، وتحتوي على حبيبات وثايلاكويدات طبيعية [ 141 والتي تستخدمها لإنتاج ATP وNADPH ، بالإضافة إلى الأكسجين. تخزن هذه البلاستيدات ثاني أكسيد الكربون في مركب رباعي الكربون، ولهذا السبب تُسمى هذه العملية بالبناء الضوئي C4 . ثم يُنقل هذا المركب الرباعي الكربون إلى بلاستيدات غمد الحزمة، حيث يُطلق ثاني أكسيد الكربون ويعود إلى النسيج المتوسط. لا تُجري بلاستيدات غمد الحزمة التفاعلات الضوئية، مما يمنع تراكم الأكسجين فيها وتعطيل نشاط إنزيم روبيسكو. [ 160 ] ولهذا السبب، تفتقر هذه البلاستيدات إلى الثايلاكويدات المنظمة في حزم الجرانا ، على الرغم من أن بلاستيدات غمد الحزمة لا تزال تحتوي على ثايلاكويدات حرة في الستروما حيث لا تزال تقوم بتدفق الإلكترون الدوري ، وهي طريقة ضوئية لتخليق الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP) لتشغيل دورة كالفن دون توليد الأكسجين. وهي تفتقر إلى النظام الضوئي الثاني ، وتحتوي فقط على النظام الضوئي الأول ، وهو المركب البروتيني الوحيد اللازم لتدفق الإلكترون الدوري. [ 141 ] [ 160 ] ولأن وظيفة بلاستيدات غمد الحزمة هي القيام بدورة كالفن وصنع السكر، فإنها غالبًا ما تحتوي على حبيبات نشا كبيرة . [ 141 ]

يحتوي كلا نوعي البلاستيدات الخضراء على كميات كبيرة من الشبكة المحيطية ، [ 141 ] والتي تستخدمها لزيادة مساحة السطح لنقل المواد من وإلى داخلها. [ 129 ] [ 130 ] تحتوي بلاستيدات النسيج المتوسط ​​على شبكة محيطية أكثر قليلاً من بلاستيدات غمد الحزمة. [ 161 ]

الوظيفة والكيمياء

بلاستيدات الخلايا الحارسة

على عكس معظم خلايا البشرة، تحتوي الخلايا الحارسة في ثغور النبات على بلاستيدات خضراء متطورة نسبيًا. [ 162 ] ومع ذلك، فإن وظيفتها الدقيقة لا تزال موضع جدل. [ 163 ]

المناعة الفطرية للنباتات

تفتقر النباتات إلى خلايا مناعية متخصصة ، إذ تشارك جميع خلايا النبات في الاستجابة المناعية . وتُعد البلاستيدات الخضراء، إلى جانب النواة والغشاء الخلوي والشبكة الإندوبلازمية ، عناصر أساسية في الدفاع ضد مسببات الأمراض . ونظرًا لدورها في الاستجابة المناعية للخلايا النباتية، غالبًا ما تستهدف مسببات الأمراض البلاستيدات الخضراء .

تمتلك النباتات استجابتين مناعيتين رئيسيتين: الاستجابة المفرطة الحساسية ، حيث تعزل الخلايا المصابة نفسها وتخضع للموت الخلوي المبرمج ، والمقاومة المكتسبة الجهازية ، حيث تطلق الخلايا المصابة إشارات تحذر باقي أجزاء النبات من وجود مسبب المرض. تحفز البلاستيدات الخضراء كلا الاستجابتين عن طريق إتلاف نظامها الضوئي عمدًا، مما ينتج عنه أنواع الأكسجين التفاعلية . تؤدي المستويات العالية من أنواع الأكسجين التفاعلية إلى الاستجابة المفرطة الحساسية . كما تقتل أنواع الأكسجين التفاعلية أي مسببات أمراض داخل الخلية بشكل مباشر. أما المستويات المنخفضة من أنواع الأكسجين التفاعلية فتبدأ المقاومة المكتسبة الجهازية ، مما يحفز إنتاج جزيئات الدفاع في باقي أجزاء النبات. [ 164 ]

من المعروف أن البلاستيدات الخضراء في بعض النباتات تتحرك بالقرب من موقع الإصابة والنواة أثناء الإصابة. [ 164 ]

يمكن للبلاستيدات الخضراء أن تعمل كمستشعرات خلوية. فبعد استشعار الإجهاد في الخلية، والذي قد يكون ناتجًا عن مسبب مرضي، تبدأ البلاستيدات الخضراء بإنتاج جزيئات مثل حمض الساليسيليك ، وحمض الجاسمونيك ، وأكسيد النيتريك ، وأنواع الأكسجين التفاعلية ، والتي تعمل كإشارات دفاعية. ونظرًا لأن أنواع الأكسجين التفاعلية جزيئات غير مستقرة، فمن المحتمل أنها لا تغادر البلاستيدة الخضراء، بل تنقل إشارتها إلى جزيء ناقل ثانٍ غير معروف. وتبدأ جميع هذه الجزيئات عملية الإشارة الرجعية ، وهي إشارات من البلاستيدة الخضراء تنظم التعبير الجيني في النواة. [ 164 ]

إضافةً إلى الإشارات الدفاعية، تُساعد البلاستيدات الخضراء، بمساعدة البيروكسيسومات ، [ 165 ] في تخليق جزيء دفاعي هام، وهو الجاسمونات . تُصنّع البلاستيدات الخضراء جميع الأحماض الدهنية في الخلية النباتية [ 164 ] [ 166 ] ، وحمض اللينوليك ، وهو حمض دهني، يُعدّ طليعةً للجاسمونات. [ 164 ]

عملية التمثيل الضوئي

إحدى الوظائف الرئيسية للبلاستيدات الخضراء هي دورها في عملية البناء الضوئي ، وهي العملية التي يتم من خلالها تحويل الضوء إلى طاقة كيميائية، لإنتاج الغذاء على شكل سكريات . يُستخدم الماء (H₂O ) وثاني أكسيد الكربون (CO₂ ) في عملية البناء الضوئي، ويتم إنتاج السكر والأكسجين (O₂ ) باستخدام طاقة الضوء . تنقسم عملية البناء الضوئي إلى مرحلتين: التفاعلات الضوئية ، حيث يتحلل الماء لإنتاج الأكسجين، والتفاعلات المظلمة ، أو دورة كالفن ، التي تُبنى فيها جزيئات السكر من ثاني أكسيد الكربون. وترتبط المرحلتان بناقلات الطاقة: الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP) ونيكوتيناميد أدينين ثنائي النوكليوتيد فوسفات (NADP⁺ ) . [ 167 ] [ 168 ]

تفاعلات الضوء

تحدث تفاعلات الضوء في عملية التمثيل الضوئي عبر أغشية الثايلاكويد .
تحدث تفاعلات الضوء في عملية التمثيل الضوئي عبر أغشية الثايلاكويد.

تحدث التفاعلات الضوئية على أغشية الثايلاكويد. فهي تأخذ الطاقة الضوئية وتخزنها في NADPH ، وهو شكل من أشكال NADP + ، و ATP لتغذية التفاعلات المظلمة .

ناقلات الطاقة

الأدينوسين ثلاثي الفوسفات ( ATP) هو الشكل المُفسفر من الأدينوسين ثنائي الفوسفات (ADP)، الذي يخزن الطاقة في الخلية ويُغذي معظم أنشطتها. يُعد ATP الشكل المُنشط، بينما يُعد ADP الشكل المُستنفد (جزئيًا). أما NADP + فهو ناقل للإلكترونات ينقل الإلكترونات عالية الطاقة. في التفاعلات الضوئية، يُختزل NADP +، أي أنه يكتسب إلكترونات، مُتحولًا إلى NADPH .

الفسفرة الضوئية

تستخدم البلاستيدات الخضراء، مثل الميتوكوندريا، الطاقة الكامنة المخزنة في تدرج تركيز أيونات الهيدروجين ( H + ) لتوليد طاقة الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP). يلتقط النظامان الضوئيان طاقة الضوء لتنشيط الإلكترونات المأخوذة من الماء ، ثم يطلقانها عبر سلسلة نقل الإلكترون . تستغل الجزيئات بين النظامين الضوئيين طاقة الإلكترونات لضخ أيونات الهيدروجين إلى حيز الثايلاكويد، مما يُنشئ تدرجًا في التركيز ، حيث يكون تركيز أيونات الهيدروجين داخل نظام الثايلاكويد أعلى بألف مرة من تركيزها في الستروما. ثم تنتشر أيونات الهيدروجين في حيز الثايلاكويد عائدةً وفقًا لتدرج تركيزها، وتتدفق إلى الستروما عبر إنزيم سينثاز الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP synthase). يستخدم هذا الإنزيم الطاقة الناتجة عن تدفق أيونات الهيدروجين لفسفرة الأدينوسين ثنائي الفوسفات (Adenosine diphosphate) إلى أدينوسين ثلاثي الفوسفات (Adenosine triphosphate )، أو الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP). [ 120 ] [ 169 ] نظرًا لأن إنزيم ATP synthase في البلاستيدات الخضراء يمتد إلى الستروما، يتم تصنيع ATP هناك، في وضع يسمح باستخدامه في التفاعلات اللاهوائية. [ 170 ]

اختزال NADP +

تُزال الإلكترونات غالبًا من سلاسل نقل الإلكترون لشحن NADP + بالإلكترونات، مما يؤدي إلى اختزاله إلى NADPH . ومثل إنزيم ATP synthase، يقوم إنزيم ferredoxin-NADP + reductase ، الذي يختزل NADP + ، بإطلاق NADPH الناتج في الستروما، حيث يكون مطلوبًا للتفاعلات اللاهوائية. [ 170 ]

لأن اختزال NADP + يزيل الإلكترونات من سلاسل نقل الإلكترون، يجب استبدالها - وهي مهمة النظام الضوئي الثاني ، الذي يقسم جزيئات الماء ( H2O ) للحصول على الإلكترونات من ذرات الهيدروجين الخاصة به . [ 120 ] [ 167 ]

الفسفرة الضوئية الدورية

بينما يقوم النظام الضوئي الثاني بتحليل الماء ضوئيًا للحصول على إلكترونات جديدة وتنشيطها، يقوم النظام الضوئي الأول ببساطة بإعادة تنشيط الإلكترونات المستنفدة في نهاية سلسلة نقل الإلكترون. عادةً، تُنقل الإلكترونات المُعاد تنشيطها بواسطة NADP + ، ولكن في بعض الأحيان قد تعود عبر سلاسل نقل الإلكترون التي تضخ أيونات الهيدروجين (H +) لنقل المزيد من أيونات الهيدروجين إلى حيز الثايلاكويد لتوليد المزيد من ATP. يُطلق على هذه العملية اسم الفسفرة الضوئية الدورية لأن الإلكترونات تُعاد تدويرها. تُعد الفسفرة الضوئية الدورية شائعة في نباتات C4 ، التي تحتاج إلى ATP أكثر من NADPH . [ 160 ]

ردود فعل قاتمة

دورة كالفن . تقوم دورة كالفن بإدخال ثاني أكسيد الكربون في جزيئات السكر.
دورة كالفن. تقوم دورة كالفن بدمج ثاني أكسيد الكربون في جزيئات السكر.

دورة كالفن ، والمعروفة أيضاً بالتفاعلات المظلمة ، هي سلسلة من التفاعلات الكيميائية الحيوية التي تثبت ثاني أكسيد الكربون في جزيئات سكر الجلايسين-3-فوسفات ، وتستخدم الطاقة والإلكترونات من جزيئات الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP) وثنائي نوكليوتيد النيكوتيناميد الفوسفات (NADPH) المُنتجة في التفاعلات الضوئية. تحدث دورة كالفن في ستروما البلاستيدة الخضراء. [ 160 ]

على الرغم من تسميتها "التفاعلات المظلمة" ، إلا أنها تحدث في معظم النباتات في الضوء، لأن التفاعلات المظلمة تعتمد على نواتج التفاعلات الضوئية. [ 11 ]

تثبيت الكربون وتخليق G3P

تبدأ دورة كالفن باستخدام إنزيم روبيسكو لتثبيت ثاني أكسيد الكربون وتحويله إلى جزيئات ريبولوز ثنائي الفوسفات (RuBP) خماسية الكربون. ينتج عن ذلك جزيئات غير مستقرة سداسية الكربون تتحلل فورًا إلى جزيئات ثلاثية الكربون تُسمى حمض 3-فوسفوجليسيريك ، أو 3-PGA. يُستخدم الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP) ونيكوتيناميد أدينين ثنائي النوكليوتيد الفوسفات (NADPH) المُنتجة في التفاعلات الضوئية لتحويل 3-PGA إلى جزيئات سكر جليسرالدهيد-3-فوسفات ، أو G3P. يُعاد تدوير معظم جزيئات G3P إلى RuBP باستخدام الطاقة المُستمدة من المزيد من ATP، ولكن واحدًا من كل ستة جزيئات مُنتجة يخرج من الدورة - وهو الناتج النهائي للتفاعلات غير الضوئية. [ 160 ]

السكريات والنشويات
يتكون السكروز من مونومر الجلوكوز (يسار)، ومونومر الفركتوز (يمين).
يتكون السكروز من مونومر الجلوكوز (يسار)، ومونومر الفركتوز (يمين).

يمكن أن يتضاعف جليسرالدهيد-3-فوسفات لتكوين جزيئات سكر أكبر مثل الجلوكوز والفركتوز . تُعالَج هذه الجزيئات، ومنها يُصنَّع السكروز ، وهو سكر ثنائي يُعرف باسم سكر المائدة، على الرغم من أن هذه العملية تحدث خارج البلاستيدات الخضراء، في السيتوبلازم . [ 171 ]

بدلاً من ذلك، يمكن أن ترتبط جزيئات الجلوكوز الأحادية في البلاستيدات الخضراء لتكوين النشا ، الذي يتراكم في حبيبات النشا الموجودة داخل البلاستيدات. [ 171 ] في ظل ظروف مثل ارتفاع تركيز ثاني أكسيد الكربون في الغلاف الجوي ، قد تنمو حبيبات النشا هذه بشكل كبير، مما يؤدي إلى تشويه الجرانا والثايلاكويدات. تُزيح حبيبات النشا الثايلاكويدات، لكنها تُبقيها سليمة. [ 172 ] كما يمكن أن تتسبب الجذور المشبعة بالماء في تراكم النشا في البلاستيدات الخضراء، ربما بسبب انخفاض كمية السكروز المُصدَّرة من البلاستيدة (أو بشكل أدق، من الخلية النباتية ). يؤدي هذا إلى استنزاف مخزون الفوسفات الحر في النبات ، مما يحفز بشكل غير مباشر تخليق النشا في البلاستيدات الخضراء. [ 172 ] على الرغم من ارتباطها بانخفاض معدلات التمثيل الضوئي، إلا أن حبيبات النشا نفسها قد لا تؤثر بالضرورة بشكل كبير على كفاءة التمثيل الضوئي، [ 173 ] وقد تكون مجرد أثر جانبي لعامل آخر مثبط لعملية التمثيل الضوئي. [ 172 ]

التنفس الضوئي

قد تحدث عملية التنفس الضوئي عندما يكون تركيز الأكسجين مرتفعًا جدًا. لا يستطيع إنزيم روبيسكو التمييز بدقة بين الأكسجين وثاني أكسيد الكربون، لذا قد يُضيف الأكسجين بدلًا من ثاني أكسيد الكربون إلى روبيسكو ثنائي الفوسفات (RuBP) عن طريق الخطأ . تُقلل هذه العملية من كفاءة عملية البناء الضوئي، إذ تستهلك الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP) والأكسجين، وتُطلق ثاني أكسيد الكربون ، ولا تُنتج أي سكر. وقد تُهدر ما يصل إلى نصف الكربون المُثبَّت بواسطة دورة كالفن. [ 167 ] تطورت عدة آليات في سلالات مختلفة لرفع تركيز ثاني أكسيد الكربون بالنسبة للأكسجين داخل البلاستيدات الخضراء، مما يزيد من كفاءة عملية البناء الضوئي. تُسمى هذه الآليات بآليات تركيز ثاني أكسيد الكربون (CCMs ) . وتشمل هذه الآليات استقلاب حمض الكراسولاسين ، وتثبيت الكربون في نباتات C4 ، [ 167 ] والبيرينويدات . تتميز البلاستيدات الخضراء في نباتات C4 بوجود تباين واضح في شكلها .

الرقم الهيدروجيني

بسبب تدرج تركيز أيونات الهيدروجين عبر غشاء الثايلاكويد، يكون باطن الثايلاكويد حمضيًا ، حيث تبلغ درجة حموضته حوالي 4، [ 174 ] بينما تكون الستروما قاعدية قليلاً، حيث تبلغ درجة حموضتها حوالي 8. [ 175 ] درجة الحموضة المثلى للستروما لدورة كالفن هي 8.1، ويتوقف التفاعل تقريبًا عندما تنخفض درجة الحموضة إلى أقل من 7.3. [ 176 ]

يمكن لثاني أكسيد الكربون الموجود في الماء أن يُكوّن حمض الكربونيك ، الذي قد يُخلّ بتوازن الرقم الهيدروجيني للبلاستيدات الخضراء المعزولة، مما يُعيق عملية التمثيل الضوئي، على الرغم من أن ثاني أكسيد الكربون يُستخدم في هذه العملية . ومع ذلك، فإن البلاستيدات الخضراء في الخلايا النباتية الحية لا تتأثر بهذا الأمر بنفس القدر. [ 175 ]

تستطيع البلاستيدات الخضراء ضخ أيونات البوتاسيوم (K +) والهيدروجين (H +) من وإلى داخلها باستخدام نظام نقل ضوئي غير مفهوم جيدًا. [ 175 ]

في وجود الضوء، يمكن أن ينخفض ​​الرقم الهيدروجيني لتجويف الثايلاكويد بما يصل إلى 1.5 وحدة من الرقم الهيدروجيني، بينما يمكن أن يرتفع الرقم الهيدروجيني للستروما بما يقارب وحدة واحدة من الرقم الهيدروجيني. [ 176 ]

تخليق الأحماض الأمينية

تُنتج البلاستيدات الخضراء وحدها جميع الأحماض الأمينية تقريبًا في الخلية النباتية داخل حشوتها [ 177 ] باستثناء الأحماض الأمينية المحتوية على الكبريت مثل السيستين والميثيونين . [ 178 ] [ 179 ] يُصنع السيستين في البلاستيدة الخضراء ( والبلاستيدة الأولية أيضًا)، ولكنه يُصنّع أيضًا في السيتوسول والميتوكوندريا ، ربما لصعوبة عبوره الأغشية للوصول إلى أماكن الحاجة إليه. [ 179 ] من المعروف أن البلاستيدة الخضراء تُنتج سلائف الميثيونين ، ولكن من غير الواضح ما إذا كانت هذه العضيّة تُكمل المرحلة الأخيرة من المسار أم أن ذلك يحدث في السيتوسول . [ 180 ]

مركبات نيتروجينية أخرى

تُنتج البلاستيدات الخضراء جميع البيورينات والبيريميدينات في الخلية ، وهي القواعد النيتروجينية الموجودة في الحمض النووي DNA والحمض النووي RNA . [ 177 ] كما أنها تُحوّل النتريت (NO2− ) إلى أمونيا ( NH3 ) التي تُزوّد ​​النبات بالنيتروجين اللازم لتكوين الأحماض الأمينية والنيوكليوتيدات . [ 177 ]

منتجات كيميائية أخرى

البلاستيدات هي موقع تخليق الدهون المتنوعة والمعقدة في النباتات. [ 181 ] [ 182 ] يُستمد الكربون المستخدم لتكوين معظم الدهون من أسيتيل مرافق الإنزيم-أ ، وهو ناتج نزع الكربوكسيل من البيروفات . [ 181 ] قد يدخل البيروفات إلى البلاستيدات من السيتوسول عن طريق الانتشار السلبي عبر الغشاء بعد إنتاجه في عملية تحلل الجلوكوز . [ 183 ] ​​يُصنع البيروفات أيضًا في البلاستيدات من فوسفينول بيروفات، وهو مستقلب يُصنع في السيتوسول من البيروفات أو حمض الفوسفوجليكوليك . [ 181 ] لا يتوفر الأسيتات الموجود في السيتوسول لتخليق الدهون في البلاستيدات. [ 184 ] يتراوح الطول النموذجي للأحماض الدهنية المنتجة في البلاستيدات بين 16 و18 ذرة كربون، مع 0-3 روابط مزدوجة من نوع سيس . [ 185 ]

تتطلب عملية التخليق الحيوي للأحماض الدهنية من أسيتيل-CoA بشكل أساسي إنزيمين. يقوم إنزيم أسيتيل-CoA كاربوكسيلاز بإنتاج مالونيل-CoA، الذي يُستخدم في كلٍ من الخطوة الأولى وخطوات الإطالة في عملية التخليق. أما إنزيم مُركِّب الأحماض الدهنية (FAS) فهو مُركَّب كبير من الإنزيمات والعوامل المساعدة، بما في ذلك بروتين حامل الأسيل (ACP) الذي يحمل سلسلة الأسيل أثناء عملية التخليق. تبدأ عملية التخليق بتكثيف مالونيل-ACP مع أسيتيل-CoA لإنتاج كيتوبوتيريل-ACP. ثم يتم اختزاله مرتين باستخدام NADPH ، وتجفيفه مرة واحدة، لإنتاج بوتيريل-ACP. وتأتي إطالة الحمض الدهني من دورات مُتكررة من تكثيف مالونيل-ACP، واختزاله، وتجفيفه. [ 181 ]

تُشتق الدهون الأخرى من مسار فوسفات ميثيل إريثريتول (MEP) وتتكون من الجبريلينات والستيرولات وحمض الأبسيسيك والفيتول والعديد من المستقلبات الثانوية . [ 181 ]

موقع

مقطع عرضي لورقة، يُظهر البلاستيدات الخضراء في خلايا النسيج المتوسط. تحتوي الخلايا الحارسة للثغور أيضًا على بلاستيدات خضراء، وإن كانت أقل بكثير من خلايا النسيج المتوسط.
مقطع عرضي لورقة، يُظهر البلاستيدات الخضراء في خلايا النسيج المتوسط . تحتوي الخلايا الحارسة للثغور أيضًا على بلاستيدات خضراء، وإن كانت أقل بكثير من خلايا النسيج المتوسط.

التوزيع في النبات

لا تحتوي جميع خلايا النبات متعدد الخلايا على البلاستيدات الخضراء. تحتوي جميع الأجزاء الخضراء من النبات على البلاستيدات الخضراء لأن اللون يأتي من الكلوروفيل . [ 11 ] عادةً ما تكون خلايا النبات التي تحتوي على البلاستيدات الخضراء خلايا برانشيمية ، على الرغم من إمكانية وجود البلاستيدات الخضراء أيضًا في النسيج الكولنشيمي . [ 186 ] تُعرف خلية النبات التي تحتوي على البلاستيدات الخضراء باسم الخلية الكلورنشيمية . تحتوي الخلية الكلورنشيمية النموذجية في النباتات البرية على ما بين 10 إلى 100 بلاستيدة خضراء.

توجد البلاستيدات الخضراء في بعض النباتات ، كالصبار ، في السيقان ، [ 187 ] بينما تتركز في معظم النباتات في الأوراق . قد يحتوي مليمتر مربع واحد من نسيج الورقة على نصف مليون بلاستيدة خضراء. [ 11 ] داخل الورقة، توجد البلاستيدات الخضراء بشكل رئيسي في طبقات النسيج المتوسط ، وفي الخلايا الحارسة للثغور . قد تحتوي خلايا النسيج المتوسط ​​العمادي على 30-70 بلاستيدة خضراء لكل خلية، بينما تحتوي الخلايا الحارسة للثغور على حوالي 8-15 بلاستيدة خضراء فقط لكل خلية، بالإضافة إلى كمية أقل بكثير من الكلوروفيل . كما توجد البلاستيدات الخضراء في خلايا غمد الحزمة الوعائية للورقة، خاصة في نباتات C4 ، التي تُجري دورة كالفن في خلايا غمد الحزمة الوعائية. وغالبًا ما تغيب عن بشرة الورقة. [ 162 ]

شبكة خلوية

عندما تتعرض البلاستيدات الخضراء لأشعة الشمس المباشرة، تتراص على طول الجدران الخلوية المائلة لتقليل تعرضها للضوء. أما في الظلام، فتنتشر على شكل طبقات على طول الجدران المحيطة لزيادة امتصاص الضوء إلى أقصى حد.
عندما تتعرض البلاستيدات الخضراء لأشعة الشمس المباشرة، تتراص على طول الجدران الخلوية المائلة لتقليل تعرضها للضوء. أما في الظلام، فتنتشر على شكل طبقات على طول الجدران المحيطة لزيادة امتصاص الضوء إلى أقصى حد.

حركة البلاستيدات الخضراء

تستطيع البلاستيدات الخضراء في خلايا النباتات والطحالب توجيه نفسها بما يتناسب مع الضوء المتاح. ففي ظروف الإضاءة المنخفضة، تنتشر على شكل طبقة، مما يزيد من مساحة سطحها لامتصاص الضوء. أما في ظروف الإضاءة الشديدة، فتسعى للاحتماء بالاصطفاف في أعمدة رأسية على طول جدار الخلية النباتية ، أو بالانعطاف جانبياً بحيث يسقط الضوء عليها من حافتها. وهذا يقلل من تعرضها للضوء ويحميها من التلف الناتج عن الأكسدة الضوئية . [ 188 ] ولعل هذه القدرة على توزيع البلاستيدات الخضراء، بحيث يمكنها الاحتماء خلف بعضها أو الانتشار، هي السبب وراء تطور النباتات البرية لتضم العديد من البلاستيدات الخضراء الصغيرة بدلاً من عدد قليل من البلاستيدات الكبيرة. [ 189 ] وتُعد حركة البلاستيدات الخضراء من أكثر أنظمة الاستجابة للمؤثرات تنظيماً في النباتات. [ 190 ] كما لوحظ أن الميتوكوندريا تتبع البلاستيدات الخضراء أثناء حركتها. [ 191 ]

في النباتات الراقية، تُنظَّم حركة البلاستيدات الخضراء بواسطة الفوتوتروبينات ، وهي مستقبلات ضوئية للضوء الأزرق مسؤولة أيضًا عن الانتحاء الضوئي في النبات. في بعض الطحالب والحزازيات والسرخسيات والنباتات المزهرة ، تتأثر حركة البلاستيدات الخضراء بالضوء الأحمر بالإضافة إلى الضوء الأزرق، [ 188 ] على الرغم من أن الأطوال الموجية الطويلة جدًا للضوء الأحمر تُثبِّط الحركة بدلًا من تسريعها. يدفع الضوء الأزرق البلاستيدات الخضراء عمومًا إلى البحث عن مكان آمن، بينما يجذبها الضوء الأحمر إلى الخارج لزيادة امتصاص الضوء إلى أقصى حد. [ 191 ]

أظهرت دراسات أجريت على نبات فاليسنيريا جيجانتيا ، وهو نبات مائي مزهر ، أن البلاستيدات الخضراء يمكنها أن تبدأ بالحركة في غضون خمس دقائق من تعرضها للضوء، على الرغم من أنها لا تُظهر في البداية أي اتجاه واضح. وقد تتحرك على طول مسارات الخيوط الدقيقة ، وحقيقة أن شبكة الخيوط الدقيقة تتغير شكلها لتشكل بنية تشبه خلية النحل تحيط بالبلاستيدات الخضراء بعد حركتها، تشير إلى أن الخيوط الدقيقة قد تساعد في تثبيت البلاستيدات الخضراء في مكانها. [ 190 ] [ 191 ]

التمايز، والتكاثر، والوراثة

ProplastidEtioplastLeucoplastChromoplastAmyloplastElaioplastProteinoplastProplastidLeucoplastEtioplastChromoplastAmyloplastElaioplastProteinoplastChloroplastChloroplastFile:Plastids types flat.svg
أنواع البلاستيدات (مخطط تفاعلي) . تحتوي النباتات على أنواع عديدة ومختلفة من البلاستيدات في خلاياها.

البلاستيدات الخضراء نوع خاص من عضيات الخلية النباتية تُسمى بلاستيدات ، مع أن المصطلحين يُستخدمان أحيانًا بشكل متبادل. توجد أنواع أخرى كثيرة من البلاستيدات، تؤدي وظائف متنوعة. جميع البلاستيدات الخضراء في النبات تنحدر من بلاستيدات أولية غير متمايزة موجودة في الزيجوت [ 177 ] ، أو البويضة المخصبة. توجد البلاستيدات الأولية عادةً في المرستيمات القمية للنبات البالغ . لا تتطور البلاستيدات الخضراء عادةً من البلاستيدات الأولية في مرستيمات قمة الجذر [ 192 ] ، بل إن تكوين الأميلوبلاستات المُخزنة للنشا هو الأكثر شيوعًا. [ 177 ]

في البراعم ، يمكن للخلايا الأولية من المرستيمات القمية للبراعم أن تتطور تدريجيًا إلى بلاستيدات خضراء في أنسجة الأوراق الضوئية مع نضوج الورقة، إذا تعرضت للضوء اللازم. [ 15 ] تتضمن هذه العملية انغمادات في الغشاء الداخلي للبلاستيدة، مكونةً صفائح غشائية تبرز في اللحمة الداخلية . ثم تنطوي هذه الصفائح الغشائية لتشكل أغشية ثايلاكويد وجرانا . [ 193 ]

إذا لم تتعرض براعم النباتات المزهرة للضوء اللازم لتكوين البلاستيدات الخضراء، فقد تتطور البلاستيدات الأولية إلى مرحلة البلاستيدة غير الناضجة قبل أن تصبح بلاستيدات خضراء. البلاستيدة غير الناضجة هي بلاستيدة تفتقر إلى الكلوروفيل ، ولها انغمادات في غشائها الداخلي تُشكل شبكة من الأنابيب في حشوتها، تُسمى الجسم الصفيحي الأولي . على الرغم من افتقار البلاستيدات غير الناضجة للكلوروفيل، إلا أنها تحتوي على مخزون من طليعة الكلوروفيل الصفراء . [ 15 ] في غضون دقائق قليلة من التعرض للضوء، يبدأ الجسم الصفيحي الأولي في إعادة تنظيم نفسه إلى أكوام من الثايلاكويدات، ويبدأ إنتاج الكلوروفيل. تستغرق هذه العملية، التي تتحول فيها البلاستيدة غير الناضجة إلى بلاستيدة خضراء، عدة ساعات. [ 193 ] لا تحتاج عاريات البذور إلى الضوء لتكوين البلاستيدات الخضراء. [ 193 ]

مع ذلك، لا يضمن الضوء أن تتحول البلاستيدة الأولية إلى بلاستيدة خضراء. إن تحول البلاستيدة الأولية إلى بلاستيدة خضراء أو أي نوع آخر من البلاستيدات يخضع في الغالب لسيطرة النواة [ 15 ] ويتأثر بشكل كبير بنوع الخلية التي توجد فيها. [ 177 ]

هناك العديد من التحولات الممكنة بين البلاستيدات.
هناك العديد من التحولات الممكنة بين البلاستيدات.

التحول البلاستيدي

إن تمايز البلاستيدات ليس دائمًا، بل إن العديد من التحولات المتبادلة ممكنة. يمكن تحويل البلاستيدات الخضراء إلى بلاستيدات ملونة ، وهي بلاستيدات مليئة بالصبغات مسؤولة عن الألوان الزاهية التي نراها في الأزهار والثمار الناضجة . كما يمكن تحويل البلاستيدات النشوية المخزنة للنشا إلى بلاستيدات ملونة، ومن الممكن أن تتطور البلاستيدات الأولية مباشرةً إلى بلاستيدات ملونة. يمكن أن تتحول البلاستيدات الملونة والنشوية أيضًا إلى بلاستيدات خضراء، كما يحدث عند إضاءة الجزر أو البطاطا . إذا تعرض النبات لإصابة، أو إذا تسبب أي عامل آخر في عودة خلية نباتية إلى حالة المرستيم ، فيمكن أن تتحول البلاستيدات الخضراء والبلاستيدات الأخرى إلى بلاستيدات أولية. البلاستيدات الخضراء والنشوية والملونة والبلاستيدات الأولية ليست حالات مطلقة؛ فالأشكال الوسيطة شائعة. [ 177 ]

قسم

لا تتطور معظم البلاستيدات الخضراء في الخلية الضوئية مباشرةً من البلاستيدات الأولية أو البلاستيدات الأصلية. في الواقع، تحتوي الخلية المرستيمية النموذجية للساق النباتية على 7-20 بلاستيدة أولية فقط. تتمايز هذه البلاستيدات الأولية إلى بلاستيدات خضراء، والتي تنقسم بدورها لتكوين 30-70 بلاستيدة خضراء الموجودة في الخلية النباتية الناضجة. إذا انقسمت الخلية ، فإن انقسام البلاستيدات الخضراء يوفر البلاستيدات الإضافية لتوزيعها بين الخليتين البنتين. [ 194 ]

في الطحالب وحيدة الخلية ، يُعد انقسام البلاستيدات الخضراء الطريقة الوحيدة لتكوين بلاستيدات خضراء جديدة. لا يوجد تمايز للبلاستيدات الأولية - فعندما تنقسم خلية طحلبية، تنقسم بلاستيداتها الخضراء معها، وتحصل كل خلية ابنة على بلاستيدة خضراء ناضجة. [ 193 ]

تنقسم جميع البلاستيدات الخضراء تقريبًا في الخلية، وليس مجموعة صغيرة منها تنقسم بسرعة. [ 195 ] لا تمتلك البلاستيدات الخضراء طور S محددًا ، إذ لا يتزامن تضاعف الحمض النووي فيها مع تضاعف الحمض النووي في خلاياها المضيفة أو يقتصر عليه. [ 196 ] يستند جزء كبير مما نعرفه عن انقسام البلاستيدات الخضراء إلى دراسة كائنات حية مثل نبات الرشاد (Arabidopsis) والطحلب الأحمر Cyanidioschyzon merolæ . [ 189 ]

تنشأ معظم البلاستيدات الخضراء في الخلايا النباتية، وجميع البلاستيدات الخضراء في الطحالب، من انقسام البلاستيدات الخضراء. (انظر المراجع المصورة)
تنشأ معظم البلاستيدات الخضراء في الخلايا النباتية، وجميع البلاستيدات الخضراء في الطحالب ، من انقسام البلاستيدات الخضراء. [ 193 ] مراجع الصور، [ 189 ] [ 197 ]

تبدأ عملية الانقسام عندما تتجمع البروتينات FtsZ1 و FtsZ2 لتكوين خيوط، وبمساعدة البروتين ARC6 ، تُشكل بنية تُسمى حلقة Z داخل حشوة البلاستيدة الخضراء. [ 189 ] [ 197 ] يُدير نظام Min موضع حلقة Z، مما يضمن انقسام البلاستيدة الخضراء بشكل متساوٍ تقريبًا. يمنع البروتين MinD بروتينات FtsZ من الارتباط وتكوين الخيوط. قد يشارك بروتين آخر، ARC3 ، في هذه العملية، ولكن دوره غير مفهوم تمامًا. تنشط هذه البروتينات عند قطبي البلاستيدة الخضراء، مانعةً تكوين حلقة Z هناك، بينما يُثبطها البروتين MinE بالقرب من مركز البلاستيدة، مما يسمح بتكوين حلقة Z. [ 189 ]

بعد ذلك، تتشكل حلقتان لتقسيم البلاستيدات ، أو حلقات PD. تقع الحلقة الداخلية لتقسيم البلاستيدات في الجانب الداخلي للغشاء الداخلي للبلاستيدة الخضراء، وتتشكل أولاً. [ 189 ] أما الحلقة الخارجية لتقسيم البلاستيدات فتوجد ملتفة حول الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء. وهي تتكون من خيوط يبلغ قطرها حوالي 5 نانومترات، [ 189 ] مرتبة في صفوف تفصل بينها مسافة 6.4 نانومتر، وتتقلص لتضغط على البلاستيدة الخضراء. عند هذه النقطة يبدأ انقباض البلاستيدة الخضراء. [ 197 ] في بعض الأنواع، مثل Cyanidioschyzon merolæ ، تحتوي البلاستيدات الخضراء على حلقة ثالثة لتقسيم البلاستيدات تقع في الفراغ بين غشائي البلاستيدة الخضراء. [ 189 ] [ 197 ]

في المراحل المتأخرة من مرحلة الانقباض، تتجمع بروتينات الدينامين حول الحلقة الخارجية لتقسيم البلاستيدات، [ 197 ] مما يساعد على توفير القوة اللازمة لضغط البلاستيدة الخضراء. [ 189 ] في هذه الأثناء، تتفكك حلقة Z والحلقة الداخلية لتقسيم البلاستيدات. [ 197 ] خلال هذه المرحلة، يتم تقسيم وتوزيع العديد من بلازميدات الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء الموجودة في الستروما على البلاستيدتين البنتين المتكونتين. [ 198 ]

لاحقًا، تهاجر الدينامينات تحت الحلقة الخارجية للبلاستيدة، لتتلامس مباشرة مع الغشاء الخارجي للبلاستيدة الخضراء، [ 197 ] لتقسيم البلاستيدة الخضراء إلى بلاستيدتين بنويتين. [ 189 ]

تبقى بقايا من حلقة الانقسام الخارجية للبلاستيدات تطفو بين البلاستيدتين البنتين، وتبقى بقايا من حلقة الدينامين متصلة بإحدى البلاستيدات البنتين. [ 197 ]

من بين الحلقات الخمس أو الست المشاركة في انقسام البلاستيدات الخضراء، توجد الحلقة الخارجية فقط المسؤولة عن انقسام البلاستيدات طوال مرحلة الانقباض والانقسام بأكملها - فبينما تتشكل الحلقة Z أولاً، لا يبدأ الانقباض إلا بعد تشكل الحلقة الخارجية المسؤولة عن انقسام البلاستيدات. [ 197 ]

انقسام البلاستيدات الخضراء: في هذه الصورة المجهرية الضوئية لبعض بلاستيدات الطحالب الخضراء، يمكن رؤية العديد من البلاستيدات الخضراء ذات الشكل الدمبلي وهي تنقسم. كما تظهر حبيبات الجرانا بالكاد على شكل حبيبات صغيرة.
انقسام البلاستيدات الخضراء: في هذه الصورة المجهرية الضوئية لبعض بلاستيدات الطحالب الخضراء ، يمكن رؤية العديد من البلاستيدات الخضراء ذات الشكل الدمبلي وهي تنقسم. كما تظهر حبيبات الجرانا بالكاد على شكل حبيبات صغيرة.

أنظمة

في أنواع الطحالب التي تحتوي على بلاستيدة خضراء واحدة، يُعدّ تنظيم انقسام البلاستيدة الخضراء بالغ الأهمية لضمان حصول كل خلية ابنة على بلاستيدة خضراء، إذ لا يمكن تكوين البلاستيدات الخضراء من الصفر. [ 91 ] [ 189 ] أما في الكائنات الحية كالنباتات، التي تحتوي خلاياها على بلاستيدات خضراء متعددة، فإن التنسيق أقل دقة وأقل أهمية. ومن المرجح أن يكون انقسام البلاستيدة الخضراء وانقسام الخلية متزامنين إلى حد ما، على الرغم من أن آليات ذلك لا تزال غير معروفة إلى حد كبير. [ 189 ]

ثبت أن الضوء ضروري لانقسام البلاستيدات الخضراء. تستطيع البلاستيدات الخضراء النمو والتقدم خلال بعض مراحل الانقباض تحت ضوء أخضر ضعيف ، لكنها بطيئة في إتمام الانقسام، إذ تحتاج إلى التعرض لضوء أبيض ساطع لإتمامه. وقد لوحظ أن أوراق السبانخ التي تنمو تحت الضوء الأخضر تحتوي على العديد من البلاستيدات الخضراء الكبيرة ذات الشكل الدمبلي. ويمكن للتعرض للضوء الأبيض أن يحفز هذه البلاستيدات على الانقسام ويقلل من عددها. [ 195 ] [ 198 ]

وراثة البلاستيدات الخضراء

مثل الميتوكوندريا ، تُورَث البلاستيدات الخضراء عادةً من أحد الأبوين. أما وراثة البلاستيدات الخضراء من كلا الأبوين - حيث تُورَث جينات البلاستيدات من كلا النباتين الأبويين - فتحدث بمستويات منخفضة جدًا في بعض النباتات المزهرة. [ 199 ]

تمنع آليات عديدة وراثة الحمض النووي للبلاستيدات الخضراء من كلا الأبوين، بما في ذلك التدمير الانتقائي للبلاستيدات الخضراء أو جيناتها داخل الجاميت أو الزيجوت ، واستبعاد البلاستيدات الخضراء من أحد الأبوين من الجنين. ويمكن فرز البلاستيدات الخضراء الأبوية بحيث يوجد نوع واحد فقط في كل نسل. [ 200 ]

تُورِّث عاريات البذور ، مثل أشجار الصنوبر ، البلاستيدات الخضراء في الغالب من الأب، [ 201 ] بينما ترث النباتات المزهرة البلاستيدات الخضراء غالبًا من الأم. [ 202 ] [ 203 ] كان يُعتقد سابقًا أن النباتات المزهرة ترث البلاستيدات الخضراء من الأم فقط. ومع ذلك، توجد الآن العديد من الحالات الموثقة لكاسيات البذور التي ترث البلاستيدات الخضراء من الأب. [ 199 ]

تمتلك النباتات المزهرة ، التي تنقل البلاستيدات الخضراء من الأم، طرقًا عديدة لمنع الوراثة الأبوية. فمعظمها ينتج خلايا منوية لا تحتوي على أي بلاستيدات. وهناك العديد من الآليات الأخرى الموثقة التي تمنع الوراثة الأبوية في هذه النباتات المزهرة، مثل اختلاف معدلات تضاعف البلاستيدات الخضراء داخل الجنين. [ 199 ]

Among angiosperms, paternal chloroplast inheritance is observed more often in hybrids than in offspring from parents of the same species. This suggests that incompatible hybrid genes might interfere with the mechanisms that prevent paternal inheritance.[199]

Transplastomic plants

Recently, chloroplasts have caught attention by developers of genetically modified crops. Since, in most flowering plants, chloroplasts are not inherited from the male parent, transgenes in these plastids cannot be disseminated by pollen. This makes plastid transformation a valuable tool for the creation and cultivation of genetically modified plants that are biologically contained, thus posing significantly lower environmental risks. This biological containment strategy is therefore suitable for establishing the coexistence of conventional and organic agriculture. While the reliability of this mechanism has not yet been studied for all relevant crop species, recent results in tobacco plants are promising, showing a failed containment rate of transplastomic plants at 3 in 1,000,000.[203]

Footnotes

  1. 12Not to be confused with chromatophore—the pigmented cells in some animals—or chromatophore—the membrane associated vesicle in some bacteria.
  2. For this reason, glaucophyte chloroplasts are also known as 'muroplasts' from the Latin muro meaning wall.

References

  1. Jones D (2003) [1917]. Roach P, Hartmann J, Setter J (eds.). English Pronouncing Dictionary. Cambridge: Cambridge University Press. ISBN 3-12-539683-2.
  2. "Chloroplast". Merriam-Webster.com Dictionary. Merriam-Webster. OCLC 1032680871.
  3. Basic Biology (18 March 2016). "Bacteria".
  4. von Mohl, H. (1835/1837). Ueber die Vermehrung der Pflanzen-Zellen durch Teilung. Dissert. Tubingen 1835. Flora 1837, .
  5. 12Schimper, AF (1883). "Über die Entwicklung der Chlorophyllkörner und Farbkörper"[About the development of the chlorophyll grains and stains]. Bot. Zeitung (in German). 41: 105–14, 121–31, 137–46, 153–62. Archived from the original on 19 October 2013.
  6. Strasburger E (1884). Das botanische Praktikum (1st ed.). Jena: Gustav Fischer.
  7. Gunning B, Koenig F, Govindjee P (2006). "A dedication to pioneers of research on chloroplast structure". In Wise RR, Hoober JK (eds.). The structure and function of plastids. Netherlands: Springer. pp. xxiii–xxxi. ISBN 978-1-4020-6570-5.
  8. Hoober JK (1984). Chloroplasts. New York: Plenum. ISBN 978-1-4613-2767-7.
  9. "chloroplast". Online Etymology Dictionary.
  10. Moore KR, Magnabosco C, Momper L, Gold DA, Bosak T, Fournier GP (2019). "An Expanded Ribosomal Phylogeny of Cyanobacteria Supports a Deep Placement of Plastids". Frontiers in Microbiology. 10 1612. doi:10.3389/fmicb.2019.01612. PMC 6640209. PMID 31354692.
  11. 12345Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). pp. 186–187. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  12. 1234567891011121314151617181920212223242526272829303132333435363738394041424344454647Kim E, Archibald JM (2009). "Diversity and Evolution of Plastids and Their Genomes". In Sandelius AS, Aronsson H (eds.). The Chloroplast. Plant Cell Monographs. Vol. 13. pp. 1–39. doi:10.1007/978-3-540-68696-5_1. ISBN 978-3-540-68692-7. S2CID 83672683.
  13. Bryant DA, Guglielmi G, de Marsac NT, Castets AM, Cohen-Bazire G (1979). "The structure of cyanobacterial phycobilisomes: A model". Archives of Microbiology. 123 (2): 311–34. Bibcode:1979ArMic.123..113B. doi:10.1007/BF00446810. S2CID 1589428.
  14. Mereschkowsky K (1905). "Über Natur und Ursprung der Chromatophoren im Pflanzenreiche"[About the nature and origin of chromatophores in the vegetable kingdom]. Biol Centralbl (in German). 25: 593–604.
  15. 1234Alberts B (2002). Molecular biology of the cell (4. ed.). New York [u.a.]: Garland. ISBN 0-8153-4072-9.
  16. Gabr A, Grossman AR, Bhattacharya D (August 2020). "Paulinella, a model for understanding plastid primary endosymbiosis". J Phycol. 56 (4): 837–843. Bibcode:2020JPcgy..56..837G. doi:10.1111/jpy.13003. PMC 7734844. PMID 32289879.
  17. 12345678910Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). p. 516. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  18. 12345Milo R, Phillips R. "Cell Biology by the Numbers: How large are chloroplasts?". book.bionumbers.org. Retrieved 7 February 2017.
  19. 12Sánchez-Baracaldo P, Raven JA, Pisani D, Knoll AH (September 2017). "Early photosynthetic eukaryotes inhabited low-salinity habitats". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (37): E7737–E7745. Bibcode:2017PNAS..114E7737S. doi:10.1073/pnas.1620089114. PMC 5603991. PMID 28808007.
  20. Falcón, Luisa I; Magallón, Susana; Castillo, Amanda (4 March 2010). "Dating the cyanobacterial ancestor of the chloroplast". The ISME Journal. 4 (6): 777–783. Bibcode:2010ISMEJ...4..777F. doi:10.1038/ismej.2010.2. ISSN 1751-7362. PMID 20200567.
  21. 12345Nakayama T, Archibald JM (April 2012). "Evolving a photosynthetic organelle". BMC Biology. 10 (1) 35. doi:10.1186/1741-7007-10-35. PMC 3337241. PMID 22531210.
  22. 1234McFadden GI (January 2001). "Chloroplast origin and integration". Plant Physiology. 125 (1): 50–3. doi:10.1104/pp.125.1.50. PMC 1539323. PMID 11154294.
  23. 12345678910111213141516171819Wise RR, Hoober JK (2006). The structure and function of plastids. Dordrecht: Springer. pp. 3–21. ISBN 978-1-4020-4061-0. Archived from the original on 8 March 2016. Retrieved 21 May 2013.
  24. Ponce-Toledo RI, Deschamps P, López-García P, Zivanovic Y, Benzerara K, Moreira D (February 2017). "An Early-Branching Freshwater Cyanobacterium at the Origin of Plastids". Current Biology. 27 (3): 386–391. Bibcode:2017CBio...27..386P. doi:10.1016/j.cub.2016.11.056. PMC 5650054. PMID 28132810.
  25. de Vries J, Archibald JM (February 2017). "Endosymbiosis: Did Plastids Evolve from a Freshwater Cyanobacterium?". Current Biology. 27 (3): R103–R105. Bibcode:2017CBio...27.R103D. doi:10.1016/j.cub.2016.12.006. PMID 28171752.
  26. López-García P, Eme L, Moreira D (December 2017). "Symbiosis in eukaryotic evolution". Journal of Theoretical Biology. 434: 20–33. Bibcode:2017JThBi.434...20L. doi:10.1016/j.jtbi.2017.02.031. PMC 5638015. PMID 28254477.
  27. 12Macorano, Luis; Nowack, Eva C.M. (13 September 2021). "Paulinella chromatophora". Current Biology. 31 (17): R1024–R1026. Bibcode:2021CBio...31R1024M. doi:10.1016/j.cub.2021.07.028. PMID 34520707.
  28. Archibald JM (January 2009). "The puzzle of plastid evolution". Current Biology. 19 (2): R81-8. Bibcode:2009CBio...19..R81A. doi:10.1016/j.cub.2008.11.067. PMID 19174147. S2CID 51989.
  29. 12345678910111213141516171819202122232425262728Keeling PJ (October 2004). "Diversity and evolutionary history of plastids and their hosts". American Journal of Botany. 91 (10): 1481–93. Bibcode:2004AmJB...91.1481K. doi:10.3732/ajb.91.10.1481. PMID 21652304. S2CID 17522125.
  30. 12Chaal BK, Green BR (February 2005). "Protein import pathways in 'complex' chloroplasts derived from secondary endosymbiosis involving a red algal ancestor". Plant Molecular Biology. 57 (3): 333–42. Bibcode:2005PMolB..57..333C. doi:10.1007/s11103-004-7848-y. PMID 15830125. S2CID 22619029.
  31. McFadden, Geoffrey I.; Van Dooren, Giel G. (2004). "Evolution: Red Algal Genome Affirms a Common Origin of All Plastids". Current Biology. 14 (13): R514–R516. Bibcode:2004CBio...14.R514M. doi:10.1016/j.cub.2004.06.041. PMID 15242632.
  32. 123456789101112131415161718192021222324252627282930Keeling PJ (March 2010). "The endosymbiotic origin, diversification and fate of plastids". Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 365 (1541): 729–48. doi:10.1098/rstb.2009.0103. PMC 2817223. PMID 20124341.
  33. Ball S, Colleoni C, Cenci U, Raj JN, Tirtiaux C (March 2011). "The evolution of glycogen and starch metabolism in eukaryotes gives molecular clues to understand the establishment of plastid endosymbiosis". Journal of Experimental Botany. 62 (6): 1775–801. doi:10.1093/jxb/erq411. PMID 21220783.
  34. Guiry, Michael D. (2 January 2024). "How many species of algae are there? A reprise. Four kingdoms, 14 phyla, 63 classes and still growing". Journal of Phycology. 60 (2): 214–228. Bibcode:2024JPcgy..60..214G. doi:10.1111/jpy.13431. ISSN 0022-3646. PMID 38245909.
  35. Archibald, John M. (27 January 2009). "The Puzzle of Plastid Evolution". Current Biology. 19 (2): R81–R88. Bibcode:2009CBio...19..R81A. doi:10.1016/j.cub.2008.11.067. PMID 19174147.
  36. Miyagishima, Shin-ya (1 March 2011). "Mechanism of Plastid Division: From a Bacterium to an Organelle". Plant Physiology. 155 (4): 1533–1544. doi:10.1104/pp.110.170688. ISSN 1532-2548. PMC 3091088. PMID 21311032.
  37. Wise, Robert R.; Hoober, J. Kenneth, eds. (2006). The Structure and Function of Plastids. Advances in Photosynthesis and Respiration. Vol. 23. Dordrecht: Springer Netherlands. doi:10.1007/978-1-4020-4061-0. ISBN 978-1-4020-4060-3.
  38. "rhodo-". The Free Dictionary. Farlex. Retrieved 7 June 2013.
  39. 123456Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). pp. 582–92. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  40. 12Lewis LA, McCourt RM (October 2004). "Green algae and the origin of land plants". American Journal of Botany. 91 (10): 1535–56. Bibcode:2004AmJB...91.1535L. doi:10.3732/ajb.91.10.1535. PMID 21652308.
  41. Machida M, Takechi K, Sato H, Chung SJ, Kuroiwa H, Takio S, et al. (April 2006). "Genes for the peptidoglycan synthesis pathway are essential for chloroplast division in moss". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (17): 6753–8. Bibcode:2006PNAS..103.6753M. doi:10.1073/pnas.0510693103. PMC 1458953. PMID 16618924.
  42. Moroney JV, Somanchi A (January 1999). "How Do algae concentrate CO2 to increase the efficiency of photosynthetic carbon fixation?". Plant Physiology. 119 (1): 9–16. doi:10.1104/pp.119.1.9. PMC 1539202. PMID 9880340.
  43. Robison, T. A., Oh, Z. G., Lafferty, D., Xu, X., Villarreal, J. C. A., Gunn, L. H., Li, F.-W. (3 January 2025). "Hornworts reveal a spatial model for pyrenoid-based CO2-concentrating mechanisms in land plants". Nature Plants. 11 (1). Nature Publishing Group: 63–73. doi:10.1038/s41477-024-01871-0. ISSN 2055-0278. PMID 39753956.
  44. 12Tartar A, Boucias DG (April 2004). "The non-photosynthetic, pathogenic green alga Helicosporidium sp. has retained a modified, functional plastid genome". FEMS Microbiology Letters. 233 (1): 153–7. doi:10.1016/j.femsle.2004.02.006. PMID 15043882.
  45. Ueno, Ryohei; Urano, Naoto; Suzuki, Motofumi (1 June 2003). "Phylogeny of the non-photosynthetic green micro-algal genus Prototheca (Trebouxiophyceae, Chlorophyta) and related taxa inferred from SSU and LSU ribosomal DNA partial sequence data". FEMS Microbiology Letters. 223 (2): 275–280. doi:10.1016/s0378-1097(03)00394-x. ISSN 0378-1097. PMID 12829298.
  46. 123Nowack EC, Vogel H, Groth M, Grossman AR, Melkonian M, Glöckner G (January 2011). "Endosymbiotic gene transfer and transcriptional regulation of transferred genes in Paulinella chromatophora". Molecular Biology and Evolution. 28 (1): 407–22. doi:10.1093/molbev/msq209. PMID 20702568.
  47. Archibald, John M. (25 September 2017). "Evolution: Protein Import in a Nascent Photosynthetic Organelle". Current Biology. 27 (18): R1004–R1006. Bibcode:2017CBio...27R1004A. doi:10.1016/j.cub.2017.08.013. ISSN 0960-9822. PMID 28950079.
  48. Singer, Anna; Poschmann, Gereon; Mühlich, Cornelia; Valadez-Cano, Cecilio; Hänsch, Sebastian; Hüren, Vanessa; Rensing, Stefan A.; Stühler, Kai; Nowack, Eva C.M. (25 September 2017). "Massive Protein Import into the Early-Evolutionary-Stage Photosynthetic Organelle of the Amoeba Paulinella chromatophora". Current Biology. 27 (18): 2763–2773.e5. Bibcode:2017CBio...27E2763S. doi:10.1016/j.cub.2017.08.010. ISSN 0960-9822. PMID 28889978.
  49. Rogers MB, Gilson PR, Su V, McFadden GI, Keeling PJ (January 2007). "The complete chloroplast genome of the chlorarachniophyte Bigelowiella natans: evidence for independent origins of chlorarachniophyte and euglenid secondary endosymbionts". Molecular Biology and Evolution. 24 (1): 54–62. doi:10.1093/molbev/msl129. PMID 16990439.
  50. 12Moustafa A, Beszteri B, Maier UG, Bowler C, Valentin K, Bhattacharya D (June 2009). "Genomic footprints of a cryptic plastid endosymbiosis in diatoms"(PDF). Science. 324 (5935): 1724–6. Bibcode:2009Sci...324.1724M. doi:10.1126/science.1172983. PMID 19556510. S2CID 11408339.
  51. Burki, Fabien; Roger, Andrew J.; Brown, Matthew W.; Simpson, Alastair G.B. (1 January 2020). "The New Tree of Eukaryotes". Trends in Ecology & Evolution. 35 (1): 43–55. Bibcode:2020TEcoE..35...43B. doi:10.1016/j.tree.2019.08.008. ISSN 0169-5347. PMID 31606140.
  52. Sibbald, Shannon J.; Archibald, John M. (20 May 2020). "Genomic Insights into Plastid Evolution". Genome Biology and Evolution. 12 (7): 978–990. doi:10.1093/gbe/evaa096. PMC 7348690. PMID 32402068.
  53. 1234567891011121314Hackett JD, Anderson DM, Erdner DL, Bhattacharya D (October 2004). "Dinoflagellates: a remarkable evolutionary experiment". American Journal of Botany. 91 (10): 1523–34. doi:10.3732/ajb.91.10.1523. PMID 21652307.
  54. Christian, R.; Labbancz, J.; Usadel, B.; Dhingra, A. (2023). "Understanding protein import in diverse non-green plastids". Frontiers in Genetics. 14 969931. doi:10.3389/fgene.2023.969931. PMC 10063809. PMID 37007964.
  55. Hines, Hunter N.; McCarthy, Peter J.; Esteban, Genoveva F. (27 February 2022). "A Case Building Ciliate in the Genus Pseudoblepharisma Found in Subtropical Fresh Water". Diversity. 14 (3): 174. Bibcode:2022Diver..14..174H. doi:10.3390/d14030174.
  56. Strassert, Jürgen F. H.; Irisarri, Iker; Williams, Tom A.; Burki, Fabien (25 March 2021). "A molecular timescale for eukaryote evolution with implications for the origin of red algal-derived plastids". Nature Communications. 12 (1): 1879. Bibcode:2021NatCo..12.1879S. doi:10.1038/s41467-021-22044-z. ISSN 2041-1723. PMC 7994803. PMID 33767194.
  57. Toledo RI (5 March 2018). Origins and early evolution of photosynthetic eukaryotes (Thesis). Université Paris-Saclay.
  58. Bodył A (February 2018). "Did some red alga-derived plastids evolve via kleptoplastidy? A hypothesis". Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 93 (1): 201–222. doi:10.1111/brv.12340. PMID 28544184. S2CID 24613863.
  59. 12Janouškovec J, Gavelis GS, Burki F, Dinh D, Bachvaroff TR, Gornik SG, et al. (January 2017). "Major transitions in dinoflagellate evolution unveiled by phylotranscriptomics". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (2): E171–E180. Bibcode:2017PNAS..114E.171J. doi:10.1073/pnas.1614842114. PMC 5240707. PMID 28028238.
  60. 1234Nair SC, Striepen B (August 2011). "What do human parasites do with a chloroplast anyway?". PLOS Biology. 9 (8) e1001137. doi:10.1371/journal.pbio.1001137. PMC 3166169. PMID 21912515.
  61. Quigg A, Kotabová E, Jarešová J, Kaňa R, Setlík J, Sedivá B, et al. (10 October 2012). "Photosynthesis in Chromera velia represents a simple system with high efficiency". PLOS ONE. 7 (10) e47036. Bibcode:2012PLoSO...747036Q. doi:10.1371/journal.pone.0047036. PMC 3468483. PMID 23071705.
  62. Meeson BW, Chang SS, Sweeney BM (1982). "Characterization of Peridinin-Chlorophyll α-Proteins from the Marine Dinoflagellate Ceratium furca". Botanica Marina. 25 (8): 347–50. Bibcode:1982BoMar..25..347M. doi:10.1515/botm.1982.25.8.347. S2CID 83867103.
  63. Dorrell RG, Smith AG (July 2011). "Do red and green make brown?: perspectives on plastid acquisitions within chromalveolates". Eukaryotic Cell. 10 (7): 856–68. doi:10.1128/EC.00326-10. PMC 3147421. PMID 21622904.
  64. 123Tengs T, Dahlberg OJ, Shalchian-Tabrizi K, Klaveness D, Rudi K, Delwiche CF, Jakobsen KS (May 2000). "Phylogenetic analyses indicate that the 19'Hexanoyloxy-fucoxanthin-containing dinoflagellates have tertiary plastids of haptophyte origin". Molecular Biology and Evolution. 17 (5): 718–29. doi:10.1093/oxfordjournals.molbev.a026350. PMID 10779532.
  65. Žerdoner Čalasan A, Kretschmann J, Gottschling M (March 2018). "Absence of co-phylogeny indicates repeated diatom capture in dinophytes hosting a tertiary endosymbiont". Organisms Diversity & Evolution. 18 (1): 29–38. Bibcode:2018ODivE..18...29Z. doi:10.1007/s13127-017-0348-0. S2CID 3830963.
  66. 123Schnepf E, Elbrächter M (1999). "Dinophyte chloroplasts and phylogeny – A review". Grana. 38 (2–3): 81–97. Bibcode:1999Grana..38...81S. doi:10.1080/00173139908559217.
  67. Skovgaard A (1998). "Role of chloroplast retention in a marine dinoflagellate". Aquatic Microbial Ecology. 15: 293–301. doi:10.3354/ame015293.
  68. Dorrell RG, Howe CJ (August 2015). "Integration of plastids with their hosts: Lessons learned from dinoflagellates". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (33): 10247–54. Bibcode:2015PNAS..11210247D. doi:10.1073/pnas.1421380112. PMC 4547248. PMID 25995366.
  69. Stocking, C. R. & Gifford, E. M. (1959). "Incorporation of thymidine into chloroplasts of Spirogyra". Biochemical and Biophysical Research Communications. 1 (3): 159–164. Bibcode:1959BBRC....1..159S. doi:10.1016/0006-291X(59)90010-5.
  70. Ris, H.; Plaut, W. (1962). "Ultrastructure of DNA-containing areas in the chloroplast of Chlamydomonas". J. Cell Biol. 13 (3): 383–91. doi:10.1083/jcb.13.3.383. PMC 2106071. PMID 14492436.
  71. Lyttleton, J. W. (1962). "Isolation of ribosomes from spinach chloroplasts". Exp. Cell Res. 26 (1): 312–317. doi:10.1016/0014-4827(62)90183-0. PMID 14467684.
  72. Heber, U. (1962). "Protein synthesis in chloroplasts during photosynthesis". Nature. 195 (1): 91–92. Bibcode:1962Natur.195...91H. doi:10.1038/195091a0. PMID 13905812. S2CID 4265095.
  73. "Chloroplasts and Other Plastids". University of Hamburg. Archived from the original on 25 September 2012. Retrieved 27 December 2012.
  74. 1234567Sandelius AS (2009). The Chloroplast: Interactions with the Environment. Springer. p. 18. ISBN 978-3-540-68696-5.
  75. 123Dann L (2002). Bioscience—Explained(PDF). Green DNA: BIOSCIENCE EXPLAINED. Archived(PDF) from the original on 14 December 2010.
  76. 1234Clegg MT, Gaut BS, Learn GH, Morton BR (July 1994). "Rates and patterns of chloroplast DNA evolution". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (15): 6795–801. Bibcode:1994PNAS...91.6795C. doi:10.1073/pnas.91.15.6795. PMC 44285. PMID 8041699.
  77. 1234Shaw J, Lickey EB, Schilling EE, Small RL (March 2007). "Comparison of whole chloroplast genome sequences to choose noncoding regions for phylogenetic studies in angiosperms: the tortoise and the hare III". American Journal of Botany. 94 (3): 275–88. doi:10.3732/ajb.94.3.275. PMID 21636401. S2CID 30501148.
  78. 12Burgess J (1989). An introduction to plant cell development. Cambridge: Cambridge university press. p. 62. ISBN 0-521-31611-1.
  79. Green, Beverley R. (28 April 2011). "Chloroplast genomes of photosynthetic eukaryotes". The Plant Journal. 66 (1): 34–44. doi:10.1111/j.1365-313X.2011.04541.x. ISSN 0960-7412. PMID 21443621.
  80. Plant Biochemistry (3rd ed.). Academic Press. 2005. p. 517. ISBN 978-0-12-088391-2. number of copies of ctDNA per chloroplast.
  81. 12Kobayashi T, Takahara M, Miyagishima SY, Kuroiwa H, Sasaki N, Ohta N, et al. (July 2002). "Detection and localization of a chloroplast-encoded HU-like protein that organizes chloroplast nucleoids". The Plant Cell. 14 (7): 1579–89. Bibcode:2002PlanC..14.1579K. doi:10.1105/tpc.002717. PMC 150708. PMID 12119376.
  82. 12Kolodner R, Tewari KK (January 1979). "Inverted repeats in chloroplast DNA from higher plants". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76 (1): 41–5. Bibcode:1979PNAS...76...41K. doi:10.1073/pnas.76.1.41. PMC 382872. PMID 16592612.
  83. 12Palmer JD, Thompson WF (June 1982). "Chloroplast DNA rearrangements are more frequent when a large inverted repeat sequence is lost". Cell. 29 (2): 537–50. doi:10.1016/0092-8674(82)90170-2. PMID 6288261. S2CID 11571695.
  84. Odahara M, Kishita Y, Sekine Y (August 2017). "MSH1 maintains organelle genome stability and genetically interacts with RECA and RECG in the moss Physcomitrella patens". The Plant Journal. 91 (3): 455–465. Bibcode:2017PlJ....91..455O. doi:10.1111/tpj.13573. PMID 28407383.
  85. Rowan BA, Oldenburg DJ, Bendich AJ (June 2010). "RecA maintains the integrity of chloroplast DNA molecules in Arabidopsis". Journal of Experimental Botany. 61 (10): 2575–88. doi:10.1093/jxb/erq088. PMC 2882256. PMID 20406785.
  86. 123456Krishnan NM, Rao BJ (May 2009). "A comparative approach to elucidate chloroplast genome replication". BMC Genomics. 10 (237): 237. doi:10.1186/1471-2164-10-237. PMC 2695485. PMID 19457260.
  87. Heinhorst S, Cannon GC (1993). "DNA replication in chloroplasts". Journal of Cell Science. 104: 1–9. doi:10.1242/jcs.104.1.1.
  88. 123456Bendich AJ (July 2004). "Circular chloroplast chromosomes: the grand illusion". The Plant Cell. 16 (7): 1661–6. Bibcode:2004PlanC..16.1661B. doi:10.1105/tpc.160771. PMC 514151. PMID 15235123.
  89. "Effect of chemical mutagens on nucleotide sequence". Biocyclopedia. Retrieved 24 October 2015.
  90. Bernstein H, Bernstein C (July 1973). "Circular and branched circular concatenates as possible intermediates in bacteriophage T4 DNA replication". Journal of Molecular Biology. 77 (3): 355–61. doi:10.1016/0022-2836(73)90443-9. PMID 4580243.
  91. 12Alberts B (2002). Molecular biology of the cell (4. ed.). New York [u.a.]: Garland. ISBN 0-8153-4072-9.
  92. Huang CY, Ayliffe MA, Timmis JN (March 2003). "Direct measurement of the transfer rate of chloroplast DNA into the nucleus". Nature. 422 (6927): 72–6. Bibcode:2003Natur.422...72H. doi:10.1038/nature01435. PMID 12594458. S2CID 4319507.
  93. 123Martin W, Rujan T, Richly E, Hansen A, Cornelsen S, Lins T, et al. (September 2002). "Evolutionary analysis of Arabidopsis, cyanobacterial, and chloroplast genomes reveals plastid phylogeny and thousands of cyanobacterial genes in the nucleus". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (19): 12246–51. Bibcode:2002PNAS...9912246M. doi:10.1073/pnas.182432999. PMC 129430. PMID 12218172.
  94. Smith DR, Lee RW (April 2014). "A plastid without a genome: evidence from the nonphotosynthetic green algal genus Polytomella". Plant Physiology. 164 (4): 1812–9. doi:10.1104/pp.113.233718. PMC 3982744. PMID 24563281.
  95. Archibald JM (December 2006). "Algal genomics: exploring the imprint of endosymbiosis". Current Biology. 16 (24): R1033-5. Bibcode:2006CBio...16R1033A. doi:10.1016/j.cub.2006.11.008. PMID 17174910.
  96. Koussevitzky S, Nott A, Mockler TC, Hong F, Sachetto-Martins G, Surpin M, et al. (May 2007). "Signals from chloroplasts converge to regulate nuclear gene expression". Science. 316 (5825): 715–9. Bibcode:2007Sci...316..715K. doi:10.1126/science.1140516. PMID 17395793. S2CID 245901639.
  97. de Vries, Jan; Curtis, Bruce A.; Gould, Sven B.; Archibald, John M. (10 April 2018). "Embryophyte stress signaling evolved in the algal progenitors of land plants". Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (15): E3471–E3480. Bibcode:2018PNAS..115E3471D. doi:10.1073/pnas.1719230115. ISSN 0027-8424. PMC 5899452. PMID 29581286.
  98. Nishiyama, Tomoaki; Sakayama, Hidetoshi; de Vries, Jan; Buschmann, Henrik; Saint-Marcoux, Denis; Ullrich, Kristian K.; Haas, Fabian B.; Vanderstraeten, Lisa; Becker, Dirk; Lang, Daniel; Vosolsobě, Stanislav; Rombauts, Stephane; Wilhelmsson, Per K.I.; Janitza, Philipp; Kern, Ramona (July 2018). "The Chara Genome: Secondary Complexity and Implications for Plant Terrestrialization". Cell. 174 (2): 448–464.e24. doi:10.1016/j.cell.2018.06.033. PMID 30007417. S2CID 206569169.
  99. Zhao, Chenchen; Wang, Yuanyuan; Chan, Kai Xun; Marchant, D. Blaine; Franks, Peter J.; Randall, David; Tee, Estee E.; Chen, Guang; Ramesh, Sunita; Phua, Su Yin; Zhang, Ben; Hills, Adrian; Dai, Fei; Xue, Dawei; Gilliham, Matthew (12 March 2019). "Evolution of chloroplast retrograde signaling facilitates green plant adaptation to land". Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (11): 5015–5020. Bibcode:2019PNAS..116.5015Z. doi:10.1073/pnas.1812092116. ISSN 0027-8424. PMC 6421419. PMID 30804180.
  100. Dadras, Armin; Fürst-Jansen, Janine M. R.; Darienko, Tatyana; Krone, Denis; Scholz, Patricia; Sun, Siqi; Herrfurth, Cornelia; Rieseberg, Tim P.; Irisarri, Iker; Steinkamp, Rasmus; Hansen, Maike; Buschmann, Henrik; Valerius, Oliver; Braus, Gerhard H.; Hoecker, Ute (28 August 2023). "Environmental gradients reveal stress hubs pre-dating plant terrestrialization". Nature Plants. 9 (9): 1419–1438. Bibcode:2023NatPl...9.1419D. doi:10.1038/s41477-023-01491-0. ISSN 2055-0278. PMC 10505561. PMID 37640935.
  101. Hedtke B, Börner T, Weihe A (August 1997). "Mitochondrial and chloroplast phage-type RNA polymerases in Arabidopsis". Science. 277 (5327): 809–11. doi:10.1126/science.277.5327.809. PMID 9242608.
  102. Harris EH, Boynton JE, Gillham NW (December 1994). "Chloroplast ribosomes and protein synthesis". Microbiological Reviews. 58 (4): 700–54. doi:10.1128/MMBR.58.4.700-754.1994. PMC 372988. PMID 7854253.
  103. 12345678910Soll J, Schleiff E (March 2004). "Protein import into chloroplasts". Nature Reviews Molecular Cell Biology. 5 (3): 198–208. doi:10.1038/nrm1333. PMID 14991000. S2CID 32453554.
  104. Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). p. 340. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  105. Lung SC, Chuong SD (April 2012). "A transit peptide-like sorting signal at the C terminus directs the Bienertia sinuspersici preprotein receptor Toc159 to the chloroplast outer membrane". The Plant Cell. 24 (4): 1560–78. Bibcode:2012PlanC..24.1560L. doi:10.1105/tpc.112.096248. PMC 3398564. PMID 22517318.
  106. Waegemann K, Soll J (March 1996). "Phosphorylation of the transit sequence of chloroplast precursor proteins". The Journal of Biological Chemistry. 271 (11): 6545–54. doi:10.1074/jbc.271.11.6545. PMID 8626459.
  107. 12May T, Soll J (January 2000). "14-3-3 proteins form a guidance complex with chloroplast precursor proteins in plants". The Plant Cell. 12 (1): 53–64. Bibcode:2000PlanC..12...53M. doi:10.1105/tpc.12.1.53. PMC 140214. PMID 10634907.
  108. Jarvis P, Soll J (December 2001). "Toc, Tic, and chloroplast protein import". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research. 1541 (1–2): 64–79. doi:10.1016/S0167-4889(01)00147-1. hdl:2381/14128. PMID 11750663.
  109. Wise RR, Hoober JK (2007). The Structure and Function of Plastids. Springer. pp. 32–33. ISBN 978-1-4020-6570-5.
  110. "Oedogonium Link ex Hirn, 1900: 17". algaeBASE. Retrieved 19 May 2013.
  111. "Chlamydomonas Ehrenberg, 1833: 288". algaeBASE. Retrieved 19 May 2013.
  112. "Spirogyra Link, 1820: 5". algaeBASE. Retrieved 19 May 2013.
  113. "Sirogonium Kützing, 1843: 278". algaeBASE. Retrieved 19 May 2013.
  114. "Zygnema C.Agardh, 1817: xxxii, 98". algaeBASE. Retrieved 19 May 2013.
  115. "Micrasterias C.Agardh ex Ralfs, 1848: 68". algaeBASE. Retrieved 19 May 2013.
  116. John DM, Brook AJ, Whitton BA (2002). The freshwater algal flora of the British Isles: an identification guide to freshwater and terrestrial algae. Cambridge: Cambridge University Press. p. 335. ISBN 978-0-521-77051-4.
  117. Fuks B, Homblé F (October 1996). "Mechanism of proton permeation through chloroplast lipid membranes". Plant Physiology. 112 (2): 759–66. doi:10.1104/pp.112.2.759. PMC 158000. PMID 8883387.
  118. Joyard J, Block MA, Douce R (August 1991). "Molecular aspects of plastid envelope biochemistry". European Journal of Biochemistry. 199 (3): 489–509. doi:10.1111/j.1432-1033.1991.tb16148.x. PMID 1868841.
  119. "Chloroplast". Encyclopedia of Science. Retrieved 27 December 2012.
  120. 1234567Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). pp. 196–197. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  121. Koike H, Yoshio M, Kashino Y, Satoh K (May 1998). "Polypeptide composition of envelopes of spinach chloroplasts: two major proteins occupy 90% of outer envelope membranes". Plant & Cell Physiology. 39 (5): 526–32. doi:10.1093/oxfordjournals.pcp.a029400. PMID 9664716.
  122. Köhler RH, Hanson MR (January 2000). "Plastid tubules of higher plants are tissue-specific and developmentally regulated". Journal of Cell Science. 113 (Pt 1): 81–9. doi:10.1242/jcs.113.1.81. PMID 10591627. Archived from the original on 20 September 2016.
  123. Gray JC, Sullivan JA, Hibberd JM, Hansen MR (2001). "Stromules: mobile protrusions and interconnections between plastids". Plant Biology. 3 (3): 223–33. Bibcode:2001PlBio...3..223G. doi:10.1055/s-2001-15204. S2CID 84474739.
  124. Schattat M, Barton K, Baudisch B, Klösgen RB, Mathur J (April 2011). "Plastid stromule branching coincides with contiguous endoplasmic reticulum dynamics". Plant Physiology. 155 (4): 1667–77. doi:10.1104/pp.110.170480. PMC 3091094. PMID 21273446.
  125. Schattat MH, Griffiths S, Mathur N, Barton K, Wozny MR, Dunn N, et al. (April 2012). "Differential coloring reveals that plastids do not form networks for exchanging macromolecules". The Plant Cell. 24 (4): 1465–77. Bibcode:2012PlanC..24.1465S. doi:10.1105/tpc.111.095398. PMC 3398557. PMID 22474180.
  126. Brunkard JO, Runkel AM, Zambryski PC (August 2015). "Chloroplasts extend stromules independently and in response to internal redox signals". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (32): 10044–9. Bibcode:2015PNAS..11210044B. doi:10.1073/pnas.1511570112. PMC 4538653. PMID 26150490.
  127. 12345678910Burgess J (1989). An introduction to plant cell development (Pbk. ed.). Cambridge: Cambridge university press. p. 46. ISBN 0-521-31611-1.
  128. Plant peptidoglycan precursor biosynthesis: Conservation between moss chloroplasts and Gram-negative bacteria
  129. 12Whatley JM (5 July 1994). "The occurrence of a peripheral reticulum in plastids of the gymnosperm Welwitschia mirabilis". New Phytologist. 74 (2): 215–220. doi:10.1111/j.1469-8137.1975.tb02608.x.
  130. 123Wise RR (2007). The Structure and Function of Plastids. Springer. pp. 17–18. ISBN 978-1-4020-6570-5.
  131. Manuell AL, Quispe J, Mayfield SP (August 2007). "Structure of the chloroplast ribosome: novel domains for translation regulation". PLOS Biology. 5 (8) e209. doi:10.1371/journal.pbio.0050209. PMC 1939882. PMID 17683199.
  132. 12Bieri, P; Leibundgut, M; Saurer, M; Boehringer, D; Ban, N (15 February 2017). "The complete structure of the chloroplast 70S ribosome in complex with translation factor pY". The EMBO Journal. 36 (4): 475–486. doi:10.15252/embj.201695959. PMC 5694952. PMID 28007896.
  133. 12Lim K, Kobayashi I, Nakai K (July 2014). "Alterations in rRNA-mRNA interaction during plastid evolution". Molecular Biology and Evolution. 31 (7): 1728–40. doi:10.1093/molbev/msu120. PMID 24710516.
  134. Hirose T, Sugiura M (January 2004). "Functional Shine-Dalgarno-like sequences for translational initiation of chloroplast mRNAs". Plant & Cell Physiology. 45 (1): 114–7. doi:10.1093/pcp/pch002. PMID 14749493. S2CID 10774032.
  135. Ma J, Campbell A, Karlin S (October 2002). "Correlations between Shine-Dalgarno sequences and gene features such as predicted expression levels and operon structures". Journal of Bacteriology. 184 (20): 5733–45. doi:10.1128/JB.184.20.5733-5745.2002. PMC 139613. PMID 12270832.
  136. Lim K, Furuta Y, Kobayashi I (October 2012). "Large variations in bacterial ribosomal RNA genes". Molecular Biology and Evolution. 29 (10): 2937–48. doi:10.1093/molbev/mss101. PMC 3457768. PMID 22446745.
  137. 12345678910Austin JR, Frost E, Vidi PA, Kessler F, Staehelin LA (July 2006). "Plastoglobules are lipoprotein subcompartments of the chloroplast that are permanently coupled to thylakoid membranes and contain biosynthetic enzymes". The Plant Cell. 18 (7): 1693–703. Bibcode:2006PlanC..18.1693A. doi:10.1105/tpc.105.039859. PMC 1488921. PMID 16731586.
  138. 12Crumpton-Taylor M, Grandison S, Png KM, Bushby AJ, Smith AM (February 2012). "Control of starch granule numbers in Arabidopsis chloroplasts". Plant Physiology. 158 (2): 905–16. doi:10.1104/pp.111.186957. PMC 3271777. PMID 22135430.
  139. Zeeman SC, Delatte T, Messerli G, Umhang M, Stettler M, Mettler T, Streb S, Reinhold H, Kötting O (2007). "Starch breakdown: Recent discoveries suggest distinct pathways and novel mechanisms". Functional Plant Biology. 34 (6): 465–73. Bibcode:2007FunPB..34..465Z. doi:10.1071/FP06313. PMID 32689375. S2CID 15995416.
  140. Rochaix JD (1998). The molecular biology of chloroplasts and mitochondria in Chlamydomonas. Dordrecht [u.a.]: Kluwer Acad. Publ. pp. 550–565. ISBN 978-0-7923-5174-0.
  141. 123456Gunning BE, Steer MW (1996). Plant cell biology: structure and function. Boston, Mass.: Jones and Bartlett Publishers. p. 24. ISBN 0-86720-504-0.
  142. Hanson D, Andrews TJ, Badger MR (2002). "Variability of the pyrenoid-based CO2 concentrating mechanism in hornworts (Anthocerotophyta)". Functional Plant Biology. 29 (3): 407–16. Bibcode:2002FunPB..29..407H. doi:10.1071/PP01210. PMID 32689485.
  143. 12Ma Y, Pollock SV, Xiao Y, Cunnusamy K, Moroney JV (June 2011). "Identification of a novel gene, CIA6, required for normal pyrenoid formation in Chlamydomonas reinhardtii". Plant Physiology. 156 (2): 884–96. doi:10.1104/pp.111.173922. PMC 3177283. PMID 21527423.
  144. 12Retallack B, Butler RD (January 1970). "The development and structure of pyrenoids in Bulbochaete hiloensis". Journal of Cell Science. 6 (1): 229–41. doi:10.1242/jcs.6.1.229. PMID 5417694.
  145. Brown MR, Arnott HJ (1970). "Structure and Function of the Algal Pyrenoid"(PDF). Journal of Phycology. 6: 14–22. doi:10.1111/j.1529-8817.1970.tb02350.x. S2CID 85604422. Archived from the original(PDF) on 31 May 2013. Retrieved 31 December 2012.
  146. 1234567Bussi Y; Shimoni E; Weiner A; Kapon R; Charuvi D; Nevo R; Efrati E; Reich Z (2019). "Fundamental helical geometry consolidates the plant photosynthetic membrane". Proc Natl Acad Sci USA. 116 (44): 22366–22375. Bibcode:2019PNAS..11622366B. doi:10.1073/pnas.1905994116. PMC 6825288. PMID 31611387.
  147. Infanger S, Bischof S, Hiltbrunner A, Agne B, Baginsky S, Kessler F (March 2011). "The chloroplast import receptor Toc90 partially restores the accumulation of Toc159 client proteins in the Arabidopsis thaliana ppi2 mutant"(PDF). Molecular Plant. 4 (2): 252–63. doi:10.1093/mp/ssq071. PMID 21220583.
  148. "thylakoid". Merriam-Webster Dictionary. Merriam-Webster. Retrieved 19 May 2013.
  149. 12345678Mustárdy L, Buttle K, Steinbach G, Garab G (October 2008). "The three-dimensional network of the thylakoid membranes in plants: quasihelical model of the granum-stroma assembly". The Plant Cell. 20 (10): 2552–7. Bibcode:2008PlanC..20.2552M. doi:10.1105/tpc.108.059147. PMC 2590735. PMID 18952780.
  150. Paolillo Jr, DJ (1970). "The three-dimensional arrangement of intergranal lamellae in chloroplasts". J Cell Sci. 6 (1): 243–55. doi:10.1242/jcs.6.1.243. PMID 5417695.
  151. Shimoni E; Rav-Hon O; Ohad I; Brumfeld V; Reich Z (2005). "Three-dimensional organization of higher-plant chloroplast thylakoid membranes revealed by electron tomography". Plant Cell. 17 (9): 2580–6. Bibcode:2005PlanC..17.2580S. doi:10.1105/tpc.105.035030. PMC 1197436. PMID 16055630.
  152. 12Austin JR, Staehelin LA (April 2011). "Three-dimensional architecture of grana and stroma thylakoids of higher plants as determined by electron tomography". Plant Physiology. 155 (4): 1601–11. doi:10.1104/pp.110.170647. PMC 3091084. PMID 21224341.
  153. "Chloroplast in a plant cell". TUMEGGY / SCIENCE PHOTO LIBRARY. Retrieved 19 August 2020.
  154. 123Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). pp. 190–193. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  155. "Australian scientists discover first new chlorophyll in 60 years". University of Sydney. 20 August 2010.
  156. 123Takaichi S (15 June 2011). "Carotenoids in algae: distributions, biosyntheses and functions". Marine Drugs. 9 (6): 1101–18. doi:10.3390/md9061101. PMC 3131562. PMID 21747749.
  157. Shapley D (15 October 2012). "Why Do Leaves Change Color in Fall?". News Articles. Retrieved 21 May 2013.
  158. 12Howe CJ, Barbrook AC, Nisbet RE, Lockhart PJ, Larkum AW (August 2008). "The origin of plastids". Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 363 (1504): 2675–85. doi:10.1098/rstb.2008.0050. PMC 2606771. PMID 18468982.
  159. "Introduction to the Rhodophyta". University of California Museum of Paleontology. Retrieved 20 May 2013.
  160. 1234567Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). pp. 200–201. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  161. Lawton JR (March 1988). "Ultrastructure of Chloroplast Membranes in Leaves of Maize and Ryegrass as Revealed by Selective Staining Methods". New Phytologist. 108 (3): 277–283. Bibcode:1988NewPh.108..277L. doi:10.1111/j.1469-8137.1988.tb04163.x. JSTOR 2433294. PMID 33873933.
  162. 12Lawson T. and J. I. L. Morison. Essay 10.1 Guard Cell Photosynthesis. Plant Physiology and Development, Sixth Edition
  163. Zeiger E, Talbott LD, Frechilla S, Srivastava A, Zhu J (2002). "The guard cell chloroplast: A perspective for the twenty-first century". New Phytologist. 153 (3): 415–424. Bibcode:2002NewPh.153..415Z. doi:10.1046/j.0028-646X.2001.NPH328.doc.x. PMID 33863211.
  164. 1234567Padmanabhan MS, Dinesh-Kumar SP (November 2010). "All hands on deck—the role of chloroplasts, endoplasmic reticulum, and the nucleus in driving plant innate immunity". Molecular Plant-Microbe Interactions. 23 (11): 1368–80. Bibcode:2010MPMI...23.1368P. doi:10.1094/MPMI-05-10-0113. PMID 20923348.
  165. Katsir L, Chung HS, Koo AJ, Howe GA (August 2008). "Jasmonate signaling: a conserved mechanism of hormone sensing". Current Opinion in Plant Biology. 11 (4): 428–35. Bibcode:2008COPB...11..428K. doi:10.1016/j.pbi.2008.05.004. PMC 2560989. PMID 18583180.
  166. Schnurr JA, Shockey JM, de Boer GJ, Browse JA (August 2002). "Fatty acid export from the chloroplast. Molecular characterization of a major plastidial acyl-coenzyme A synthetase from Arabidopsis". Plant Physiology. 129 (4): 1700–9. doi:10.1104/pp.003251. PMC 166758. PMID 12177483.
  167. 1234Biology—Concepts and Connections. Pearson. 2009. pp. 108–118.
  168. Campbell NA, Williamson B, Heyden RJ (2006). Biology: Exploring Life. Boston, Massachusetts: Pearson Prentice Hall. ISBN 978-0-13-250882-7. Archived from the original on 2 November 2014. Retrieved 6 January 2009.
  169. Jagendorf AT, Uribe E (January 1966). "ATP formation caused by acid-base transition of spinach chloroplasts". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 55 (1): 170–7. Bibcode:1966PNAS...55..170J. doi:10.1073/pnas.55.1.170. PMC 285771. PMID 5220864.
  170. 12Berg JM, Tymoczko JL, Stryer L (2002). Biochemistry (5. ed., 4. print. ed.). New York, NY [u.a.]: W. H. Freeman. pp. Section 19.4. ISBN 0-7167-3051-0.
  171. 12Berg JM, Tymoczko JL, Stryer L (2002). Biochemistry (5. ed., 4. print. ed.). New York, NY [u.a.]: W. H. Freeman. pp. Section 20.1. ISBN 0-7167-3051-0.
  172. 123Wample RL, Davis RW (September 1983). "Effect of Flooding on Starch Accumulation in Chloroplasts of Sunflower (Helianthus annuus L.)". Plant Physiology. 73 (1): 195–8. doi:10.1104/pp.73.1.195. PMC 1066435. PMID 16663176.
  173. Carmi A, Shomer I (1979). "Starch Accumulation and Photosynthetic Activity in Primary Leaves of Bean (Phaseolus vulgaris L.)". Annals of Botany. 44 (4): 479–484. doi:10.1093/oxfordjournals.aob.a085756.
  174. Berg JM, Tymoczko JL, Stryer L (2002). Biochemistry (5th ed.). W H Freeman. pp. Section 19.4. Archived from the original on 16 January 2021. Retrieved 30 October 2012.
  175. 123Hauser M, Eichelmann H, Oja V, Heber U, Laisk A (July 1995). "Stimulation by Light of Rapid pH Regulation in the Chloroplast Stroma in Vivo as Indicated by CO2 Solubilization in Leaves". Plant Physiology. 108 (3): 1059–1066. doi:10.1104/pp.108.3.1059. PMC 157457. PMID 12228527.
  176. 12Werdan K, Heldt HW, Milovancev M (August 1975). "The role of pH in the regulation of carbon fixation in the chloroplast stroma. Studies on CO2 fixation in the light and dark". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics. 396 (2): 276–92. doi:10.1016/0005-2728(75)90041-9. PMID 239746.
  177. 1234567Burgess J (1989). An introduction to plant cell development. Cambridge: Cambridge university press. p. 56. ISBN 0-521-31611-1.
  178. Ferro M, Salvi D, Riviere-Rolland H, Vermat T, Seigneurin-Berny D, Grunwald D, et al. (August 2002). "Integral membrane proteins of the chloroplast envelope: identification and subcellular localization of new transporters". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (17): 11487–92. Bibcode:2002PNAS...9911487F. doi:10.1073/pnas.172390399. PMC 123283. PMID 12177442.
  179. 12Rolland N, Droux M, Douce R (March 1992). "Subcellular Distribution of O-Acetylserine(thiol)lyase in Cauliflower (Brassica oleracea L.) Inflorescence". Plant Physiology. 98 (3): 927–35. doi:10.1104/pp.98.3.927. PMC 1080289. PMID 16668766.
  180. Ravanel S, Gakière B, Job D, Douce R (June 1998). "The specific features of methionine biosynthesis and metabolism in plants". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (13): 7805–12. Bibcode:1998PNAS...95.7805R. doi:10.1073/pnas.95.13.7805. PMC 22764. PMID 9636232.
  181. 12345Buchanan BB, Gruissem W, Jones RL (Eds.). 2015. Biochemistry & Molecular Biology of Plants. Wiley Blackwell.
  182. Joyard J, Ferro M, Masselon C, Seigneurin-Berny D, Salvi D, Garin J, Rolland N (April 2010). "Chloroplast proteomics highlights the subcellular compartmentation of lipid metabolism". Progress in Lipid Research. 49 (2): 128–58. doi:10.1016/j.plipres.2009.10.003. PMID 19879895.
  183. Proudlove MO, Thurman DA (1981). "The uptake of 2-oxoglutarate and pyruvate by isolated pea chloroplasts". New Phytologist. 88 (2): 255–264. Bibcode:1981NewPh..88..255P. doi:10.1111/j.1469-8137.1981.tb01722.x.
  184. Bao X, Focke M, Pollard M, Ohlrogge J. 2000. Understanding in vivo carbon precursor supply for fatty acid synthesis in leaf tissue. Plant Journal 22, 39–50.
  185. Ohlrogge J, Browse J (1995). "Lipid Biosynthesis". The Plant Cell. 7 (7): 957–970. doi:10.1105/tpc.7.7.957. PMC 160893. PMID 7640528.
  186. Roberts K (2007). Handbook of plant science. Chichester, West Sussex, England: Wiley. p. 16. ISBN 978-0-470-05723-0.
  187. Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman, Minorsky PV, Jackson RB (2009). Biology (8th ed.). Benjamin Cummings (Pearson). p. 742. ISBN 978-0-8053-6844-4.
  188. 12Wells, C.; Balish, E. (1979). "The mitogenic activity of lipopolysaccharide for spleen cells from germfree, conventional, and gnotobiotic rats". Canadian Journal of Microbiology. 25 (9): 1087–93. doi:10.1139/m79-166. PMID 540263.
  189. 123456789101112Glynn JM, Miyagishima SY, Yoder DW, Osteryoung KW, Vitha S (May 2007). "Chloroplast division". Traffic. 8 (5): 451–61. doi:10.1111/j.1600-0854.2007.00545.x. PMID 17451550. S2CID 2808844.
  190. 12Dong XJ, Nagai R, Takagi S (1998). "Microfilaments Anchor Chloroplasts along the Outer Periclinal Wall in Vallisneria Epidermal Cells through Cooperation of PFR and Photosynthesis". Plant and Cell Physiology. 39 (12): 1299–306. doi:10.1093/oxfordjournals.pcp.a029334.
  191. 123Takagi S (June 2003). "Actin-based photo-orientation movement of chloroplasts in plant cells". The Journal of Experimental Biology. 206 (Pt 12): 1963–9. Bibcode:2003JExpB.206.1963T. doi:10.1242/jeb.00215. PMID 12756277.
  192. Gunning BE, Steer MW (1996). Plant cell biology: structure and function. Boston, Mass.: Jones and Bartlett Publishers. p. 20. ISBN 0-86720-504-0.
  193. 12345Burgess J (1989). An introduction to plant cell development (Pbk. ed.). Cambridge: Cambridge university press. pp. 54–55. ISBN 0-521-31611-1.
  194. Burgess J (1989). An introduction to plant cell development (Pbk. ed.). Cambridge: Cambridge university press. p. 57. ISBN 0-521-31611-1.
  195. 12Possingham JV, Rose RJ (1976). "Chloroplast Replication and Chloroplast DNA Synthesis in Spinach Leaves". Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 193 (1112): 295–305. Bibcode:1976RSPSB.193..295P. doi:10.1098/rspb.1976.0047. S2CID 2691108.
  196. Cannon GC, Heinhorst S (1 January 1993). "DNA replication in chloroplasts". Journal of Cell Science. 104 (1): 1–9. CiteSeerX 10.1.1.1026.3732. doi:10.1242/jcs.104.1.1.
  197. 123456789Miyagishima SY, Nishida K, Mori T, Matsuzaki M, Higashiyama T, Kuroiwa H, Kuroiwa T (March 2003). "A plant-specific dynamin-related protein forms a ring at the chloroplast division site". The Plant Cell. 15 (3): 655–65. Bibcode:2003PlanC..15..655M. doi:10.1105/tpc.009373. PMC 150020. PMID 12615939.
  198. 12Hashimoto H, Possingham JV (April 1989). "Effect of light on the chloroplast division cycle and DNA synthesis in cultured leaf discs of spinach". Plant Physiology. 89 (4): 1178–83. doi:10.1104/pp.89.4.1178. PMC 1055993. PMID 16666681.
  199. 1234Hansen AK, Escobar LK, Gilbert LE, Jansen RK (January 2007). "Paternal, maternal, and biparental inheritance of the chloroplast genome in Passiflora (Passifloraceae): implications for phylogenetic studies". American Journal of Botany. 94 (1): 42–6. Bibcode:2007AmJB...94...42H. doi:10.3732/ajb.94.1.42. PMID 21642206.
  200. Birky CW (December 1995). "Uniparental inheritance of mitochondrial and chloroplast genes: mechanisms and evolution". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (25): 11331–8. Bibcode:1995PNAS...9211331B. doi:10.1073/pnas.92.25.11331. PMC 40394. PMID 8524780.
  201. Powell W, Morgante M, McDevitt R, Vendramin GG, Rafalski JA (August 1995). "Polymorphic simple sequence repeat regions in chloroplast genomes: applications to the population genetics of pines". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (17): 7759–63. Bibcode:1995PNAS...92.7759P. doi:10.1073/pnas.92.17.7759. PMC 41225. PMID 7644491. In the pines, the chloroplast genome is transmitted through pollen
  202. Stegemann S, Hartmann S, Ruf S, Bock R (July 2003). "High-frequency gene transfer from the chloroplast genome to the nucleus". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (15): 8828–33. Bibcode:2003PNAS..100.8828S. doi:10.1073/pnas.1430924100. PMC 166398. PMID 12817081.
  203. 1 2 روف إس، كارشر دي، بوك آر (أبريل 2007). "تحديد مستوى احتواء الجين المنقول الذي يوفره تحويل البلاستيدات الخضراء" . وقائع الأكاديمية الوطنية للعلوم في الولايات المتحدة الأمريكية . 104 (17): 6998-7002 . Bibcode : 2007PNAS..104.6998R . doi : 10.1073/pnas.0700008104 . PMC 1849964. PMID 17420459 .